Cátedras

Celiaquía

Intolerancia al gluten

Intolerancia al glutenLa enfermedad celíaca es una enteropatía crónica mediada por el sistema inmunitario que sigue a la presencia de gluten en la dieta en individuos genéticamente predispuestos[1]. El diagnóstico actual se basa en demostrar la enteropatía en biopsias de intestino delgado en las que el examen histológico muestra atrofia vellosa, hiperplasia de las criptas y linfocitosis intraepitelial, y la presencia de anticuerpos circulantes específicos para la transglutaminasa tisular (tTG), péptidos de gliadina deamidada (DGP) y endomisio (EMA). En los niños que tienen síntomas indicativos de enfermedad celíaca, un título de anticuerpo tTG (tTGA) fuertemente positivo y un genotipo HLA asociado a enfermedad celíaca, sirven para el diagnóstico sin la necesidad de una biopsia de intestino delgado[2]. Desde la década de 1950, cuando se identificó al gluten como el desencadenante causante de la enfermedad celíaca, una dieta estricta y sin gluten (GFD) durante toda la vida ha sido el pilar del tratamiento.

Si bien la enfermedad celíaca es común en todo el mundo y está aumentando en prevalencia en muchas poblaciones, con frecuencia no se detecta en la práctica clínica[3]. La enfermedad sintomática y no tratada se asocia con una morbilidad y mortalidad elevadas y con una calidad de vida deficiente[4][5][6][7]. La presentación clínica es amplia e incluye trastornos gastrointestinales, fatiga crónica, deficiencias de nutrientes, crecimiento deficiente y retraso en el desarrollo. Las manifestaciones extraintestinales son comunes[8]. En los niños, las manifestaciones extraintestinales incluyen estatura baja, anemia, pubertad tardía, hipoplasia del esmalte dental, disminución de la densidad ósea, úlceras orales, enfermedad hepática y biliar y dermatitis herpetiforme. El crecimiento deficiente y la anemia tienden a ser los más comunes y existe una correlación con el daño histológico más grave en el momento del diagnóstico en comparación con los niños con una presentación gastrointestinal[9]. Los efectos insidiosos de la enfermedad celíaca no diagnosticada en niños incluyen trastornos del comportamiento y rendimiento educativo reducido[10].

La enfermedad celíaca también se asocia con un mayor riesgo de enfermedades autoinmunes, como la tiroiditis de Hashimoto, la enfermedad de Graves y la diabetes tipo 1 (T1D)[11][12][13][14]. Un gran estudio de población danés reveló que la prevalencia de enfermedades autoinmunes era del 16,4% entre los pacientes con enfermedad celíaca en comparación con el 5,3% en la población general en 2016. Aproximadamente el 5% de los pacientes con enfermedad celíaca tienen T1D y un 6% de los pacientes con T1D tienen Enfermedad celíaca[15]. En el norte de Cerdeña, una población con una alta prevalencia de Enfermedad celíaca[16], los pacientes con tiroiditis autoinmune tuvieron una prevalencia 4 veces mayor de Enfermedad celíaca que la población general y aunque la deficiencia de hierro estaba presente en casi la mitad, ninguno tenía síntomas gastrointestinales[17]. La co-ocurrencia de enfermedades autoinmunes apoya el concepto de vías genéticas e inmunitarias compartidas que contribuyen a la desregulación inmune y la pérdida de auto tolerancia, sin embargo, no está claro si la enfermedad celíaca conduce directamente a otras enfermedades autoinmunes y si el diagnóstico y tratamiento temprano con una GFD altera el riesgo[18]. La secuenciación de la próxima generación de la región HLA muestra que los haplotipos clase II extendidos difieren entre las poblaciones[19]; esto puede explicar parcialmente las diferencias regionales en el grado de asociación entre la enfermedad celíaca y la enfermedad autoinmune. La fuerte asociación de enfermedad celíaca con autoinmunidad, especialmente T1D y la enfermedad tiroidea autoinmune, apoya la detección de estas afecciones en pacientes con Enfermedad celíaca.

El consumo de alimentos que contienen gluten es necesario para que la enfermedad celíaca se desarrolle. El gluten es la proteína viscoelástica que permanece después de lavar la masa y está compuesta por gliadinas solubles en alcohol y gluteninas insolubles en alcohol. Las propiedades reológicas del gluten le permiten conferir una textura ligera y extensible a los alimentos, lo que la hace muy apreciada en la industria alimentaria. El gluten de trigo moderno surge de un genoma hexaploide, lo que lo hace heterogéneo y genéticamente más complejo que el genoma humano. Proteínas similares ricas en glutamina y prolina (bajo el término colectivo prolaminas) se encuentran en cebada y centeno y se denominan hordeínas y secalinas, respectivamente, y también son tóxicas en la enfermedad celíaca. Avenin, el componente prolamina en la avena, es filogenéticamente distinto de la prolamina de trigo, cebada y centeno. La avena es considerada segura para el consumo por la mayoría de las personas con enfermedad celíaca[20][21][22] y algunos cultivares pueden ser más inmunogénicos[23]. Varias revisiones de expertos han concluido que se necesita más investigación sobre la toxicidad de la avena en la enfermedad celíaca[24][25].

Por qué la enfermedad celíaca se desarrolla en algunas personas sigue sin respuesta. Los estudios observacionales epidemiológicos y prospectivos implican una serie de factores ambientales que afectan el desarrollo de la enfermedad. También está surgiendo un papel para el microbioma en el desarrollo de la tolerancia y la patogénesis de la enfermedad. Los estudios genéticos e inmunológicos han revelado la importancia de los genes clave de susceptibilidad HLA y no HLA en el desarrollo de la enfermedad y una población patógena de larga duración de células T específicas del gluten que se dirigen a ciertos péptidos de gluten (epítopes de células T). La historia emergente del desarrollo de la enfermedad celíaca es una en la que los factores ambientales aumentan el riesgo en individuos genéticamente predispuestos al configurar el contexto inmunológico en el que se presenta el gluten y cambiar el equilibrio de la tolerancia al gluten a la reactividad, lo que puede ser en parte mediado a través de las interacciones microbioma-huésped. Los problemas clínicos contemporáneos de importancia incluyen la aceleración de la detección y el diagnóstico de enfermedad celíaca, la mejora y la calidad de vida y los resultados de salud para los diagnosticados, y el desarrollo de tratamientos que sean más efectivos y menos onerosos que el enfoque actual de una GFD estricta y permanente.

La enfermedad celíaca es una enfermedad global que se ha notificado en Europa occidental y oriental, América del Norte, América del Sur, Asia, Oceanía y África[26]. Parece ser relativamente poco común en el sureste de Asia y en el África subsahariana. Informes recientes de China sugieren que la enfermedad podría ser sustancialmente desconocida allí, sin embargo, se requieren más estudios basados ​​en biopsias[27]. En una revisión sistemática y un metaanálisis, la prevalencia global de seroprevalencia y confirmada por biopsia de enfermedad celíaca se estimó en 1,4% y 0,7%, respectivamente. La sero-prevalencia de Enfermedad celíaca en los Estados Unidos a partir de las encuestas nacionales de examen de salud y nutrición (NHANES, por sus siglas en inglés) fue del 0,7% y, de acuerdo con una serie de estudios de población de todo el mundo, mostró que la mayoría de los casos siguen sin diagnosticarse en la comunidad[28]. Debido a que enfermedad celíaca con frecuencia no se diagnostica, un enfoque activo de búsqueda de casos se considera la mejor práctica.

La prevalencia de la enfermedad celíaca varía con el sexo, la edad y la ubicación geográfica, y la frecuencia de predisposición de los haplotipos HLA en la población general y el consumo per cápita de trigo son los dos determinantes principales de la prevalencia. Existe un sesgo de género modesto en favor de las mujeres[29]. El agrupamiento familiar en enfermedad celíaca es común con el 10% de los familiares de primer grado de una persona afectada por Enfermedad celíaca afectada. La alta tasa de concordancia para gemelos monocigóticos (80%) en comparación con hermanos con HLA idénticos (30%) y gemelos dicigóticos (10%) subraya la importancia de ambos factores genéticos (genes HLA y no HLA) y el ambiente en el riesgo de enfermedad celíaca[30].

La alta prevalencia de enfermedad celíaca observada entre las poblaciones que viven en áreas con un alto consumo de productos de trigo es altamente sugerente para la participación del gluten en la dieta en el desarrollo de la enfermedad. Aunque la ingesta de gluten es necesaria para que se desarrolle la enfermedad celíaca, no explica únicamente por qué no todas las personas genéticamente predispuestas que consumen gluten desarrollan la enfermedad y por qué la enfermedad puede desarrollarse más adelante en la vida a pesar de muchas décadas de ingesta de gluten. Las diferencias significativas en la prevalencia de enfermedad celíaca entre personas con antecedentes genéticos similares y la ingesta de trigo que viven en regiones cercanas (por ejemplo, Finlandia y Karelia rusa) son pruebas sólidas de que el riesgo de enfermedad celíaca está influenciado por otros factores, además de la susceptibilidad genética y el consumo de trigo[31]. De hecho, estudios de población han implicado una serie de factores ambientales asociados con el riesgo de enfermedad celíaca.

El fuerte aumento de la incidencia de enfermedad celíaca en niños pequeños después de los cambios en la recomendación nacional de alimentación infantil en Suecia a mediados de los años 80 que sugería posponer la introducción de gluten de 4 a 6 meses de edad indicaba que el momento de la ingesta de gluten influyó en el riesgo de enfermedad celíaca[32]. Sin embargo, la epidemia de enfermedad celíaca que se produjo en Suecia ocurrió simultáneamente con las compañías que aumentaron el contenido de gluten en fórmulas comerciales para bebés y se vio confundida por el efecto protector observado de la larga duración de la lactancia materna[33]. Esto hizo que fuera difícil separar si el tiempo o la cantidad de ingesta de gluten en relación con el destete afectó el riesgo de enfermedad celíaca. La hipótesis de que el momento de la primera exposición al gluten se asoció con la enfermedad celíaca se apoyó aún más en un estudio que halló que los bebés expuestos al gluten ya sea temprano (<4 meses) o tarde (> 7 meses) tenían un mayor riesgo[34].  Desde que se publicó este primer estudio prospectivo, varios documentos de seguimiento de cohortes prospectivas longitudinales de mayor tamaño resumidas en dos revisiones sistémicas recientes con metaanálisis[35][36] no han podido confirmar los hallazgos previos.

Si bien existen grandes diferencias en la ingesta de gluten entre los países[37], no está del todo claro si la cantidad de ingesta de gluten durante la primera infancia afecta el riesgo de enfermedad celíaca. Un estudio retrospectivo de casos y controles sueco indicó que los niños que más tarde desarrollaron enfermedad celíaca consumieron mayores cantidades de gluten antes de los 2 años que los niños sanos. Este hallazgo estuvo en línea con otro estudio transversal del mismo grupo que observó una prevalencia más baja de enfermedad celíaca en una cohorte de nacimientos que reportó un menor consumo de gluten en niños nacidos después[38] en comparación con niños nacidos durante los años de la epidemia sueca[39]. En un estudio de casos y controles, un alto consumo de gluten aumentó el riesgo de enfermedad celíaca en niños suecos[40]. Sin embargo, si la ingesta de gluten contribuye al desarrollo de la enfermedad celíaca sigue siendo controvertido, ya que otro estudio multicéntrico que consta de otros cinco países europeos no encontró asociación con la enfermedad celíaca y la cantidad de gluten, excepto para los niños que tienen el haplotipo HLA-DQ2.2 / DQ7 de menor riesgo[41]. Se están realizando estudios prospectivos más amplios con un seguimiento más prolongado que arrojarán luz sobre si la ingesta de gluten es un factor de riesgo independiente en enfermedad celíaca.

Varios estudios han demostrado que los niños que posteriormente desarrollan enfermedad celíaca se ven más frecuentemente afectados por infecciones durante la vida temprana[42][43][44]. Una limitación es que estos estudios se basan en cuestionarios completados por los padres y no se especifica el tipo y el sitio de la infección. En un estudio multicéntrico, prospectivo de cohorte de nacimiento, los padres que informaron una infección gastrointestinal 3 meses antes de la seroconversión de tTGA tenían un mayor riesgo de autoinmunidad de enfermedad celíaca más adelante en la vida[45]. También existe un efecto de la estacionalidad en el riesgo de desarrollar enfermedad celíaca, hipotetizado como causada por infecciones virales que ocurren durante un período vulnerable de desarrollo inmune. Esto está respaldado por la asociación con infecciones frecuentes por rotavirus y un mayor riesgo de autoinmunidad de Enfermedad celíaca a partir de estudios prospectivos longitudinales y un efecto protector de la vacunación contra el rotavirus[46].

Cómo las infecciones desencadenan el desarrollo de enfermedad celíaca permanece sin explicación. Las infecciones gastrointestinales pueden aumentar la permeabilidad gastrointestinal para aumentar el paso de gluten a través de la mucosa, o elevar la expresión de tTG que puede aumentar la generación de péptidos de gluten inmunogénicos. La mímica molecular podría ocurrir si el antígeno extraño (como un virus o una bacteria) comparte secuencias o similitudes estructurales con el gluten en sí mismo y luego inicia una respuesta anti-gluten. Varios estudios han mostrado que anticuerpos contra adenovirus[47][48][49]  y péptidos de rotavirus[50] circulan en sueros de enfermedad celíaca pero se requieren estudios adicionales para determinar la importancia de estas asociaciones con la patogénesis de la enfermedad. En un trabajo reciente en ratones, la infección viral provocó una ruptura en la tolerancia oral a las proteínas de la dieta[51]. Algunos reovirus pueden promover un fenotipo proinflamatorio en células dendríticas (CD) de ratón que pierden su capacidad para promover la tolerancia a los antígenos de los alimentos y provocar una respuesta patogénica de las células T en su lugar. La infección por reovirus causa un aumento de la señalización por los interferones tipo 1 y una mayor expresión del factor regulador de la transcripción interferón factor 1 (IRF1) que puede bloquear la conversión de células T en células T reguladoras (Tregs) y promover una respuesta proinflamatoria TH1 a antígenos de la dieta, respectivamente. Como relevancia para los humanos, los pacientes con enfermedad celíaca tendían a tener títulos más altos de anticuerpos anti-reovirus. Es importante destacar que las infecciones por reovirus a menudo son silenciosas o asintomáticas en los seres humanos y una gran parte de la población está expuesta a infecciones gastrointestinales autolimitadas durante la infancia. Los hallazgos proporcionan una explicación mecánica que vincula a un virus aparentemente inocuo con la pérdida de tolerancia a un antígeno alimentario común. Se requiere más investigación para desentrañar la importancia de las interacciones virales, bacterianas u otras interacciones con el huésped microbiano o infecciones en el desarrollo de enfermedad celíaca.

Los primeros estudios de casos y controles informaron una relación entre el uso previo de antibióticos y el posterior desarrollo de la enfermedad celíaca tanto en adultos como en niños[52]. De manera similar, los niños con enfermedad celíaca tenían más probabilidades de haber nacido por cesárea[53]. Un gran estudio de casos y controles encontró que la cesárea de emergencia no se asoció con un desarrollo posterior de enfermedad celíaca[54]. Sin embargo, se han reportado datos conflictivos, por ejemplo, no existe relación entre el aumento del riesgo de enfermedad celíaca y el uso de antibióticos durante los primeros 6 meses de vida o el uso de antibióticos durante el embarazo[55]. El estudio de los Determinantes Ambientales de la Diabetes en los Jóvenes (TEDDY) es un estudio de cohorte multicéntrico de observación que tiene como objetivo identificar los factores ambientales asociados con T1D y enfermedad celíaca en niños con riesgo HLA seguido desde el nacimiento[56]. No encontró asociación entre el uso de antibióticos y la autoinmunidad de enfermedad celíaca durante los primeros 4 años de vida  o entre el parto por cesárea y un mayor riesgo de enfermedad celíaca. De manera similar, los grandes estudios observacionales no encontraron un vínculo entre la cesárea y el desarrollo de enfermedad celíaca[57]. Finalmente, un gran estudio basado en registros, que incluyó niños de dos cohortes independientes, encontró que el modo de parto no se asoció con un mayor riesgo de diagnóstico de enfermedad celíaca. Si bien los datos son contradictorios, los vínculos potenciales entre los eventos tempranos que pueden alterar la composición de la microbiota, como el uso de antibióticos o el modo de parto, y la enfermedad celíaca posterior, implican un papel del microbioma en el desarrollo de la enfermedad.

La colonización microbiana se produce al nacer y determina el desarrollo del sistema inmunitario mucoso y sistémico y la barrera intestinal. Estas interacciones huésped-microbio continúan a lo largo de la vida, y se ha planteado la hipótesis de una interrupción de estas interacciones, a través de la alteración de la composición o funciones bacterianas, para aumentar el riesgo de una gama de enfermedades autoinmunes o inflamatorias como la enfermedad  celíaca. La composición de microbiota alterada en pacientes con enfermedad celíaca puede representar un modificador ambiental del desarrollo de la enfermedad.

Un estudio inicial describió la presencia de bacterias con forma de bastón en las biopsias duodenales de niños suecos con enfermedad  celíaca nacidos durante la epidemia, que no se observaron en las biopsias de los niños de control[58] o en los niños nacidos después de la epidemia[59]. Las bacterias se identificaron posteriormente como Clostridium spp, Prevotella spp y Actinomyces spp, y se sugirió que su presencia era un factor de riesgo para la enfermedad celíaca que contribuyó al aumento de la incidencia de la enfermedad en Suecia desde 1985-1995[60]. Los estudios clínicos posteriores han descrito diferencias en la composición microbiana fecal y duodenal en niños y adultos con enfermedad celíaca en comparación con el tratamiento, o controles sanos[61]. Si bien no se ha descrito ninguna firma microbiana específica para la enfermedad celíaca, muchos grupos han descrito aumentos en las proporciones de Bacteroides y miembros de Proteobacteria, y disminuciones en Lactobacillus y Bifidobacterium[62]. Además, se demostró que los pacientes con enfermedad celíaca que sufren síntomas persistentes tienen una mayor abundancia de Proteobacteria en comparación con aquellos que estaban asintomáticos[63]. Si bien estos estudios sugieren una asociación entre la composición microbiana alterada y el desarrollo de enfermedad celíaca, faltan estudios que exploren los mecanismos y la causalidad. Además, si las alteraciones en la composición microbiana son una causa o consecuencia de la inflamación del intestino delgado no se ha aclarado por completo.

Estudios recientes han sugerido que la microbiota de los pacientes con enfermedad celíaca puede albergar bacterias más patógenas o proinflamatorias. Los informes de diagnóstico de enfermedad celíaca después de la infección por Campylobacter jejuni[64] sugieren que las infecciones bacterianas podrían preceder el desarrollo de enfermedad celíaca. Los clones de Escherichia coli aislados de pacientes con enfermedad celíaca expresaron un mayor número de genes virulentos en comparación con los aislados de controles sanos[65]. De manera similar, la presencia de genes virulentos fue mayor en Staphylococcus spp y en cepas de Bacteroides fragilis aisladas de pacientes con enfermedad celíaca en comparación con controles sanos[66][67]. Es importante destacar que las cepas aisladas de pacientes con enfermedad celíaca fueron más proinflamatorias in vitro y estimularon la morfología alterada, característica de la maduración, el aumento de la producción de citoquinas proinflamatorias y la integridad de la barrera epitelial alterada. De manera similar, se identificó Neisseria flavescens, un miembro de Proteobacteria, en el duodeno de pacientes con Enfermedad celíaca activa pero no de sujetos control e indujo un fenotipo inflamatorio en enfermedad celíaca humanas y murinas[68].

En contraste con los estudios anteriores, las infecciones bacterianas también pueden proteger contra el desarrollo de enfermedad celíaca. Algunos estudios indican una relación inversa entre la presencia de Helicobacter pylori y enfermedad celíaca tanto en adultos como en niños[69][70][71], mientras que otros estudios han mostrado una asociación positiva o no[72][73]. Mecanismos subyacentes a esta asociación no se han elucidado y las inconsistencias entre los estudios pueden relacionarse con diferencias en las técnicas utilizadas para determinar H. pylori o su virulencia. Las cepas menos virulentas pueden exacerbar la respuesta de la mucosa en la enfermedad celíaca, mientras que las cepas más virulentas pueden brindar protección contra la ella[74].

Las diferencias funcionales en la microbiota también podrían afectar los procesos metabólicos importantes en la patogenia de la enfermedad celíaca. El tracto gastrointestinal alberga diversas bacterias que participan en el metabolismo del gluten in vitro y esto puede diferir entre individuos sanos y aquellos con enfermedad celíaca[75][76][77]. Como la mayoría de los estudios han medido la composición microbiana en la enfermedad celíaca activa o tratada en comparación con los controles sanos, es difícil determinar si existen diferencias funcionales antes del inicio de la enfermedad.

Para comprender mejor el papel potencial de los factores microbianos en el desarrollo de la enfermedad celíaca estudios previos han perfilado la composición microbiana fecal de niños genéticamente en riesgo. Se demostró que los niños de alto riesgo albergan una microbiota diferente en comparación con los niños que tenían un riesgo genético bajo de enfermedad celíaca[78][79], lo que sugiere que el genotipo de alto riesgo puede influir en la composición temprana de la microbiota intestinal. Los lactantes con mayor riesgo de enfermedad celíaca tuvieron una mayor prevalencia de E. coli enterotoxigénica en comparación con aquellos con riesgo bajo o intermedio de enfermedad celíaca[80]. Además, en una cohorte de 164 lactantes, los que tenían riesgo de enfermedad celíaca tenían menores números de Bifidobacterium spp y B. longum y un mayor número de B. fragilis y Staphylococcus spp . Las diferencias en Bacteroides y bifidobacterias fueron atenuadas por la lactancia materna[81]. Se demostró recientemente que los niños en riesgo que más tarde desarrollaron enfermedad celíaca tenían una trayectoria microbiana alterada que coincidía con cambios inmunes. Estos cambios sugirieron una “maduración prematura” de la microbiota intestinal en niños que desarrollaron enfermedad celíaca[82]. Por otro lado, la microbiota fecal de los bebés en riesgo que desarrollaron enfermedad celíaca fue similar a los 9 a 12 meses de los bebés que se mantuvieron saludables a la edad de cuatro años[83]. Si la composición o función microbiana duodenal se altera en individuos en riesgo que desarrollan enfermedad celíaca, debe investigarse más a fondo en ensayos clínicos más grandes.

La dieta y el ambiente también determinan la composición de la microbiota intestinal[84][85], destacando la complejidad de delinear la influencia del genotipo y el ambiente en la conformación de la microbiota. Se necesitan ensayos clínicos más amplios en los que se estudie la composición y la función de la microbiota en individuos en riesgo y se realice un seguimiento a lo largo del tiempo para ayudar a comprender las interacciones gen-microbio en el desarrollo de la enfermedad celíaca.

El modelado de enfermedad celíaca ha sido un desafío ya que no existe un modelo animal único que abarque todos los elementos de la enfermedad. Como resultado, los modelos de ratón han desempeñado un papel limitado en el desarrollo o prueba preclínica de nuevas terapias[86] y se han utilizado con más frecuencia para investigar mecanismos específicos relacionados con la patogénesis de la enfermedad[87]. La transferencia de células T específicas del gluten a ratones inmunodeficientes se ha utilizado para estudiar el papel de las células T CD4 + en la mediación del daño tisular[88][89]. Los modelos de ratones transgénicos también se han utilizado para investigar citoquinas específicas o componentes genéticos en la patogénesis de la TDC. Por ejemplo, los ratones sobre expresan IL-15 en la lámina propia[90] o en el epitelio han arrojado luz sobre el papel de los mediadores innatos en el desarrollo de la lesión intestinal en enfermedad celíaca. Los ratones que expresan HLA-DQ2 o -DQ8 humano desarrollan células T específicas para el gluten y alguna activación inmune innata después de la sensibilización a gliadina con un adyuvante. Sin embargo, no progresan a una enteropatía inducida por el gluten en toda regla[91][92][93] enfatizando la importancia de factores genéticos, inmunes o ambientales adicionales para desencadenar la destrucción de tejidos en enfermedad celíaca. Esta falta de pérdida espontánea de tolerancia al gluten en modelos de ratones transgénicos puede aprovecharse y utilizarse para comprender mejor los factores ambientales que participan en la pérdida de tolerancia al gluten. Por ejemplo, los mecanismos a través de los cuales los microbios contribuyen al desarrollo de la enfermedad celíaca pueden estudiarse manipulando la composición de la microbiota o exponiendo modelos de ratones transgénicos a ciertas bacterias.

En ratones que expresan HLA-DQ8 humano, se encontró que la composición de la microbiota intestinal influye en el grado de inmunopatología inducida por el gluten[94]. Los ratones que albergan una microbiota limitada sin Proteobacterias y patógenos oportunistas se protegieron de la patología inducida por el gluten y las respuestas inmunitarias. Sin embargo, este efecto protector se perdió cuando estos ratones se complementaron con una cepa enteroadherente de E. coli que se aisló de un paciente con enfermedad celíaca. Del mismo modo, el tratamiento de ratones libres de patógenos específicos con vancomicina aumentó los niveles de Proteobacteria, incluyendo Escherichia, y condujo a una patología más severa inducida por el gluten. Si bien los mecanismos siguen siendo esquivos, los resultados proporcionan una prueba de concepto de que los microbios podrían alterar la forma en que un huésped responde al gluten y, por lo tanto, podrían ser considerados un enfoque profiláctico.

Los ratones gnotobióticos, o ratones colonizados con microbios conocidos, proporcionan un modelo en el que el impacto de bacterias específicas en las respuestas mediadas por el gluten in vivo se puede estudiar en un entorno controlado. Los estudios de ratones colonizados con bacterias aisladas del duodeno de pacientes con enfermedad celíaca o de controles sanos han demostrado que las bacterias participan en el metabolismo del gluten in vivo. Curiosamente, la inmunogenicidad de los productos finales generados por la digestión con gluten mediada por bacterias difirió según el tipo de bacteria. Después de la digestión con proteasas humanas, elastasa de Pseudomonas aeruginosa generaron péptidos de gluten altamente inmunogénicos que podrían activar fuertemente las células T específicas del gluten de los pacientes humanos con enfermedad celíaca. Estos péptidos fueron más capaces de translocar la barrera epitelial, lo que posiblemente facilitó las interacciones inmunitarias entre la célula y el péptido. A la inversa, los péptidos de gluten producidos tras la digestión por proteasas humanas o por elastasa de P. aeruginosa fueron destoxificados o degradados por Lactobacillus spp , un miembro central de un microbioma sano. El uso continuado de modelos gnotobióticos será fundamental para la comprensión de cómo los microbios o patógenos pueden interactuar con el anfitrión y / o gluten de contribuir a la patogénesis de enfermedad celíaca. Es importante destacar que estos modelos también se pueden usar para probar terapias dirigidas a la microbiota para la enfermedad celíaca.

Tolerase G

El único tratamiento para la enfermedad celíaca es una dieta sin gluten. Sin embargo, hay interés entre los pacientes en una terapia médica para reemplazar o ayudar a la dieta sin gluten. Las terapias incluyen enzimas que degradan el gluten (glutenasas) aunque algunas de las disponibles no se han demostrado capaces para digerir los epítopos tóxicos del gluten.

El alto contenido de prolina del gluten provoca una estructura compleja con regiones que son inaccesibles para las endoproteasas humanas, permitiendo que grandes fragmentos de gluten ricos en prolina alcancen el intestino delgado intacto[95]. Estas moléculas grandes, los productos de la digestión del gluten, tienen una longitud de hasta 33 aminoácidos. Estas moléculas incluyen la α-gliadina 33-mer y los fragmentos γ-gliadina 26-mer. Estas moléculas particularmente tóxicas entran en la lámina propia del intestino delgado, se activan por la enzima tisular transglutaminasa que facilita su unión a HLA-DQ2 y -DQ8 en células T presentadoras de antígeno. La unión se optimiza con fragmentos de nueve o más aminoácidos de longitud. Por lo tanto, la reducción de la inmunogenicidad del gluten requiere que se degrade en fragmentos más cortos que nueve aminoácidos antes de que la proteína alcance el intestino delgado[96].  Un enfoque terapéutico es administrar prolil endopeptidasas que pueden degradar completamente el gluten en el estómago, minimizando la presencia de los fragmentos de gluten tóxicos más grandes y se han propuesto algunas enzimas para este propósito.

Tolerase G, un suplemento dietético que contiene prolil endoproteasa derivada de Aspergillus niger (AN-PEP), ha tenido resultados prometedores in vitro y ex vivo[97][98] y, de hecho, un estudio determinó la eficiencia de la degradación del gluten por una enzima de corte post-prolina, Aspergillus niger prolyl endoprotease (AN-PEP), en un sistema dinámico que imita al tracto gastrointestinal humano (sistema TIM) demostrando como AN-PEP aceleró la degradación del gluten en el compartimento del estómago hasta tal punto que casi nada de gluten alcanzó el compartimento del duodeno. AN-PEP es capaz de acelerar la degradación del gluten en un sistema gastrointestinal que imita mucho la digestión in vivo. Esto implica que la administración conjunta de AN-PEP con una comida que contenga gluten podría eliminar la toxicidad del gluten, ofreciendo así a los pacientes la posibilidad de abandonar (ocasionalmente) su estricta dieta sin gluten.

En otro estudio, el gluten y su digestión péptica / tríptica se trataron con prolil endoproteasa, y la destrucción de los epítopos de células T se probó mediante espectrometría de masas, ensayos de proliferación de células T, ELISA, HPLC de fase inversa, SDS-PAGE y transferencia de Western, observando que la prolil endoproteasa de A. niger funciona de manera óptima a pH 4-5, se mantiene estable a pH 2 y es completamente resistente a la digestión con pepsina. Además, la enzima derivada de A. niger degradó eficazmente todos los péptidos estimuladores de células T ensayados, así como las moléculas de gluten intactas. En promedio, la endoproteasa de A. niger degradó los péptidos de gluten 60 veces más rápido que una prolil oligopeptidasa. En conjunto, estos resultados indican que la enzima de A. niger degrada eficientemente las proteínas del gluten[99].

Otro estudio concluyó que la dosis óptima de AN-PEP es de 20 unidades de prolina proteasa (PPU) / g de gluten aunque la composición de la comida influye en la cantidad de AN-PEP necesaria para la eliminación del gluten[100].

Se sabe que la endoproteasa prolil de Aspergillus niger (AN-PEP) degrada eficazmente las moléculas de gluten en péptidos no inmunogénicos in vitro y un estudio se diseñó para evaluar la eficacia de AN-PEP en la degradación del gluten en una comida baja en calorías y en sujetos sanos demostrándose como AN-PEP mejoró significativamente la digestión de gluten en el estómago de voluntarios sanos[101]. Otro estudio demostró como en un entorno de comida fisiológica, la AN-PEP degradó significativamente la mayoría del gluten en el estómago antes de que ingresara en el duodeno[102].

También ha podido comprobarse como la enzima Aspergillus niger prolil endoproteasa (AN-PEP), que degrada los residuos inmunogénicos ricos en prolina en los péptidos de gluten, se puede utilizar en el desarrollo de nuevos productos de trigo, adecuados para individuos con sensibilidad al gluten[103].

Bifidobacterium longum ES1

Se sabe que el genotipo HLA puede explicar aproximadamente un 40% del riesgo genético de la enfermedad celíaca por lo que es necesario estudiar otros factores genéticos de predisposición y factores que modulan sutilmente la activación y diferenciación de las células T. Esto incluye factores ambientales que actualmente se cree que afectan el sistema inmunológico y el desarrollo de la microbiota intestinal. Un estudio evaluó las asociaciones entre los factores ambientales tempranos, los subconjuntos de linfocitos y la composición de la microbiota intestinal en lactantes con riesgo familiar de enfermedad celíaca. Se demostró que la alimentación con fórmula y las infecciones infantiles se asociaron con mayores recuentos de CD3 +, CD4 +, CD4 + CD38 +, CD4 + CD28 + y CD3 + CD4 + CD45RO +. Las infecciones infantiles también se asociaron con un mayor recuento de células CD4 + CD25 +, CD4 + HLA-DR + y NK. El parto por cesárea y la administración de la vacuna contra el rotavirus se asociaron con un menor porcentaje de células CD4 + CD25 +. La ingesta de antibióticos en lactantes se asoció y se correlacionó con menores recuentos de Bifidobacterium longum y mayores recuentos del grupo de Bacteroides fragilis. Las infecciones infantiles y la ingesta de antibióticos en los primeros 4 meses de vida son los factores asociados más fuertemente y / o con mayor frecuencia a las subpoblaciones de linfocitos y la composición de la microbiota, respectivamente, en los bebés con riesgo de enfermedad celíaca[104].

Los probióticos son microorganismos vivos que, cuando se administran en cantidades adecuadas, confieren un beneficio para la salud al huésped[105] y cepas específicas han demostrado una eficacia en el tratamiento de la enfermedad celíaca, una enteropatía crónica causada por la ingestión de cereales que contienen gluten en individuos genéticamente susceptibles[106]. En particular, una serie de cepas pertenecientes al género Bifidobacterium se han propuesto como suplementos beneficiosos para una amplia gama de condiciones de salud[107]. Se han observado agotamientos en bifidobacterias en pacientes con enfermedad celíaca[108], y se han hecho intentos para complementar algunas cepas como terapia para celiaquía[109].

Se ha informado que algunos péptidos opioides derivados de los alimentos causan enfermedades, como la inflamación gastrointestinal, la enfermedad celíaca y los trastornos mentales. Bifidobacterium es un miembro importante de la microbiota intestinal dominante, particularmente en el intestino de los bebés y todas las cepas analizadas mostraron algún nivel de actividad de dipeptidil peptidasa, que se cree que está involucrada en la degradación de los péptidos opioides derivados de los alimentos. Sin embargo, esta actividad fue mayor en las cepas bifidobacterianas que se encuentran comúnmente en los intestinos de los bebés humanos, como Bifidobacterium longum subsp. longum , B. longum subsp. infantis, Bifidobacterium breve y Bifidobacterium bifidum, que en otras especies, como Bifidobacterium animalis y Bifidobacterium pseudolongum. Además, las cepas de B. infantis y B. bifidum mostraron actividad degradativa en péptidos opioides derivados de alimentos, como la casomorfina-7 derivada de la leche humana y bovina, y la gliadorfina-7 derivada del gluten de trigo. Un examen adicional de las cepas de B. bifidum reveló algunas cepas bifidobacterianas que podrían degradar los tres péptidos[110].

Varios estudios han investigado sobre si las alteraciones en el desarrollo de la microbiota intestinal y los marcadores inmunitarios preceden a la aparición de la enfermedad celíaca en bebés con riesgo familiar de desarrollar la enfermedad y los hallazgos sugieren que las alteraciones en la trayectoria temprana de la microbiota intestinal en lactantes con riesgo de enfermedad celíaca podrían influir en el proceso de maduración inmune y predisponer a la enfermedad[111].

El equilibrio proteolítico disregulado se ha descrito en varios trastornos gastrointestinales[112][113]. Anteriormente se ha demostrado que la expresión de la serina elafina inhibidora de la serina proteasa humana disminuye en el duodeno de pacientes con enfermedad celíaca activa[114][115]. Lactococcus lactis recombinante que expresa elafina ( L. lactis- lefina) ha demostrado ser protector en varios modelos de colitis murina y para prevenir la inmunopatología del gluten en el modelo NOD / DQ8 de sensibilidad al gluten. Sin embargo, dadas las inquietudes planteadas con la aplicación clínica de tales organismos modificados genéticamente se ha investigado el efecto de una bacteria comensal que expresa de forma natural una aglomeración similar a la elafina. El papel de las serpinas producidas por las bacterias es desconocido, pero se cree que contribuyen al mutualismo comensal del huésped ya que estas serpinas probablemente brindan protección contra las proteasas del huésped[116][117]. Aunque se sabe que las serpinas eucariotas como la elafina poseen propiedades antiinflamatorias, las serpinas producidas por bacterias no han sido exploradas por su capacidad terapéutica in vivo . La cepa probiótica comensal derivada del lactante Bifidobacterium longum NCC2705 ( B. longum srp +) produce una serpina (Srp) codificada por el gen BL0108 ( srp ) de una manera no constitutiva. La expresión de srp se induce en el tracto intestinal murino y Srp puede mostrar propiedades antiinflamatorias ya que inhibe la elastasa pancreática y la elastasa neutrofílica in vitro y la administración del comensal B. longum srp + previene la inmunopatología en el modelo de sensibilidad al gluten NOD / DQ8 en ratones[118][119]. De manera que tanto la cepa de B. longum srp + de tipo salvaje como una cepa recombinante que expresan constitutivamente srp [ B. longum srp (Con)] previenen la inmunopatología inducida por gliadina en ratones NOD / DQ8, mientras que una cepa knockout srp ( B. longum Δ srp ) no lo hace. Estos resultados sugieren claramente que el efecto beneficioso de B. longum srp + está mediado por Srp. Esto justifica la investigación clínica de comensal B. longum srp + en el manejo de la sensibilidad al gluten / trigo no celíaco y la enfermedad celíaca (NCG / WS) o afecciones gastrointestinales crónicas asociadas con el desequilibrio proteolítico.

Un estudio[120] tuvo como objetivo evaluar la capacidad de diferentes cepas de Bifidobacterium para contrarrestar los efectos inflamatorios de los péptidos derivados de la gliadina en células epiteliales intestinales (Caco-2). Un extracto comercial de varios tipos de gliadina (Gld) (alfa, beta, gamma se sometió a digestión gastrointestinal in vitro (pepsina a pH 3, pancreatina-bilis a pH 6), inoculado o no con células suspensiones (10 (8) unidades formadoras de colonias / ml) de B. animalis, B. longum o B. bifidum en un sistema bicameral. Los péptidos derivados de gliadina generados se identificaron por fase inversa-HPLC-ESI-MS / MS. Se expusieron cultivos de células Caco-2 a las diferentes digestiones del péptido gliadina (0,25 mg de proteína / ml) y la expresión de ARNm del factor nuclear kappa-B (NF-kappaB), factor de necrosis tumoral alfa (TNF-alfa) y quimiocina CXCR3 El receptor se analizó mediante la reacción en cadena de la polimerasa con transcriptasa inversa semicuantitativa (RT-PCR) en células estimuladas. La producción de los marcadores proinflamatorios NF-kappaB p50, TNF-alfa e IL-1beta (interleuquina 1beta) por células Caco-2 también se determinó mediante ELISA. Los péptidos de las digestiones de gliadina inoculadas con bifidobacterias no mostraron las secuencias de aminoácidos tóxicas identificadas en aquellos no inoculados. El análisis de RT-PCR evidenció una regulación negativa en la expresión de ARNm de biomarcadores proinflamatorios. De acuerdo con estos resultados, se redujo la producción de NF-kappaB, TNF-alfa e IL-1beta y se abolió, respectivamente en cultivos de células expuestas a digestiones de gliadina inoculadas con bifidobacteria. Por lo tanto, las bifidobacterias cambian el patrón peptídico derivado de la gliadina y, por lo tanto, atenúan sus efectos proinflamatorios en las células Caco-2.

En otro estudio[121], los efectos de Bifidobacterium (Bifidobacterium bifidum y Bifidobacterium longum) y bacterias Gram-negativas (Bacteroides fragilis, Escherichia coli CBL2 y Shigella CBD8 aisladas de pacientes con enfermedad celíaca), solo y en la presencia de enfermedad celíaca, (gliadinas y / o IFN-gamma) sobre la expresión del marcador de superficie y la producción de citoquinas por PBMC, se determinaron. Estos efectos también se evaluaron en cocultivos de PBMC y células Caco-2. Las bacterias gramnegativas indujeron una mayor secreción de citoquinas proinflamatorias de tipo Th1 (IL-12 y / o IFN-gamma) que la Bifidobacterium. Shigella CBD8 y E. coli CBL2 regulan por incremento principalmente la expresión de HLA-DR y CD40 involucrada en la activación de Th1, y las cepas de Bifidobacterium regulan por incremento la expresión de CD83. También se detectaron interacciones específicas entre las bacterias estudiadas, las gliadinas y el IFN-gamma, que favorecieron las características inmunitarias de enfermedad celíaca. Por lo tanto, las bacterias intestinales podrían ser factores adicionales que regulan la capacidad de los monocitos reclutados en la mucosa para responder a las gliadinas y al IFN-gamma en pacientes con enfermedad celíaca, que influyen en el curso de la enfermedad.

Se cree que las bifidobacterias intestinales influyen en las enfermedades relacionadas con el sistema inmunitario. El objetivo de un estudio fue evaluar las posibles relaciones entre la composición de las bifidobacterias intestinales y la enfermedad celíaca en niños. Se analizaron un total de 48 muestras fecales (30 y 18 muestras de pacientes con enfermedad celíaca activa y no activa, respectivamente) y 33 muestras de biopsia duodenal de pacientes con enfermedad celíaca (25 y 8 muestras de pacientes con enfermedad celíaca activa y no activa, respectivamente). Los pacientes con enfermedad celíaca activa y no activa mostraron un número menor de especies de Bifidobacterium y B. longum en las heces y biopsias duodenales que los controles, y estas diferencias fueron particularmente notables entre los pacientes con enfermedad celíaca activa y los controles. La prevalencia de B. catenulatum fue mayor en las biopsias de los controles que en los pacientes con enfermedad celíaca activa y no activa, mientras que la prevalencia de B. dentium fue mayor en las heces de los pacientes con enfermedad celíaca no activa que en los controles. Las correlaciones entre los niveles de especies de Bifidobacterium y B. longum en muestras fecales y de biopsia se detectaron tanto en pacientes con enfermedad celíaca como en controles. Las reducciones en las poblaciones totales de Bifidobacterium y B. longum se asociaron con enfermedad celíaca activa y no activa en comparación con los controles. Estos grupos bacterianos podrían constituir nuevos objetivos para las terapias dietéticas adyuvantes, aunque la confirmación de esta hipótesis requeriría investigaciones adicionales[122].

Las interacciones entre el sistema inmunitario y la microbiota intestinal pueden jugar un papel en la enfermedad celíaca y en un estudio[123], se evaluaron los efectos potenciales de Bifidobacterium longum CECT 7347 en niños con enfermedad celíaca recién diagnosticados. Se realizó un ensayo doble ciego, aleatorizado, controlado con placebo en 33 niños que recibieron una cápsula que contenía B. longum CECT 7347 (10⁹ unidades formadoras de colonias) o placebo (excipientes) diariamente durante 3 meses junto con una dieta sin gluten. Las medidas de resultado (línea de base y posterior a la intervención) incluyeron el fenotipo inmunitario de las células de la sangre periférica, la concentración sérica de citoquinas, el contenido de IgA secretora fecal (sIgA), los parámetros antropométricos y la composición de la microbiota intestinal. Las comparaciones entre los grupos revelaron mayores aumentos del percentil de altura en el grupo de B. longum CECT 7347 que en el grupo placebo, así como disminución de linfocitos T CD3⁺ periféricos y concentración de TNF-α ligeramente reducida. Las comparaciones dentro del grupo de los valores iniciales y finales no revelaron diferencias en los linfocitos T y citoquinas en el grupo placebo, mientras que la disminución de CD3⁺ y el antígeno leucocitario humano (HLA) -DR⁺ linfocitos T y la concentración de TNF-α ligeramente reducida se detectó en el grupo con B. longum CECT 7347. La comparación entre los grupos mostró que la administración de B. longum CECT 7347 redujo los números del grupo Bacteroides fragilis y el contenido de sIgA en heces en comparación con la administración de placebo y los hallazgos sugieren que B. longum CECT 7347 podría ayudar a mejorar el estado de salud de los pacientes con enfermedad celíaca que tienden a mostrar alteraciones en la composición de la microbiota intestinal y una respuesta inmunitaria sesgada incluso en una dieta libre de gluten.

Otro estudio evalúa los efectos de la administración oral de Bifidobacterium longum.CECT 7347 sobre alteraciones mediadas por gliadina en la deposición hepática de hierro y la concentración de hemoglobina, el receptor de transferrina hepática (TfR) -2, IL-6, TNF-α y expresión de hepcidina (Hamp) (mRNA), y la producción de péptidos de hepcidina activa por cromatografía líquida. En animales, las concentraciones de péptido activo de Hamp en plasma aumentaron significativamente en comparación con los controles. Se calcularon correlaciones significativas entre la expresión de Hamp y el contenido de hierro en el hígado (Fe de hígado = 1/0 · 0032 + 0 · 032 x Hamp (exp)) y concentraciones de hemoglobina (Hb = 11 · 49 + 10 · 13 x (Hamp (exp) ) 1/2). Estos datos indican que la administración oral de B. longum mejora las perturbaciones mediadas por gliadina en la deposición de hierro del hígado y la movilización[124].

En otro estudio[125] se investigaron los efectos mediados por gliadina en animales destetados, sensibilizados o no con interferón (IFN) -γ. Además, se estudió la influencia de la administración conjunta de Bifidobacterium longum CECT 7347 junto con los cambios en el proteoma de las secciones yeyunales, utilizando 2DE y la huella dactilar del péptido MALDITOF-TOF. Los hallazgos se compararon con los resultados de los grupos animales de control. En el análisis de componentes principales (PCA) del patrón de proteoma, se extrajeron dos componentes que representan el 79,8% de la variabilidad en la expresión de las proteínas identificadas. El análisis de PCA discriminó claramente entre el proteoma de animales alimentados con gliadinas solo y los alimentados con gliadinas y B. longum simultáneamente. Sin embargo, los patrones de proteoma de animales sensibilizados con IFN-γ y gliadinas alimentadas junto con B. longum, o solo, no pudo ser discriminado. La alimentación con gliadina causó efectos inflamatorios, así como cambios en las proteínas involucradas en la homeostasis iónica intracelular, el recambio de lípidos, la motilidad celular y la regulación redox en las secciones intestinales. Después de administrar gliadinas a animales sensibilizados con IFN-γ, también se detectaron cambios en las proteínas involucradas en el reclutamiento y la función de las células inmunocompetentes, el efecto trófico en el intestino y la organización de las miofibras, lo que refleja la lesión más marcada mediada por gliadina en las secciones yeyunales. La administración de la cepa bacteriana a ratas alimentadas con gliadinas pareció mejorar la inflamación causada por la alimentación de gliadina sola, aunque, en animales sensibilizados, la administración conjunta de B. longum tuvo efectos menos marcados, lo que probablemente se debió al daño más extenso de la mucosa intestinal. Los patrones de proteoma en animales a los que se administró B. longum solo no revelaron ningún cambio que reflejara el deterioro de las funciones yeyunales.

En un estudio[126], se supuso que la administración de Bifidobacterium longum CECT 7347, previamente seleccionada para reducir los efectos inmunotóxicos de gliadina in vitro, podría ejercer efectos protectores en un modelo animal de enteropatía inducida por gliadina. Los efectos de esta bacteria se evaluaron en ratas recién nacidas alimentadas con gliadina sola o sensibilizadas con interferón (IFN) -γ y alimentadas con gliadina. Se recogieron cortes de tejido yeyunal para análisis histológicos, de expresión de ARNm de NFκB y de producción de citoquinas. Las poblaciones de leucocitos y los subconjuntos de células T se analizaron en muestras de sangre periférica. La posible translocación de la bacteria a diferentes órganos se determinó por recuento en placa y la composición de la microbiota colónica se cuantificó por PCR en tiempo real. La alimentación con gliadina sola redujo la altura de los enterocitos y las células CD4 + periféricas, pero aumentó las células CD4 + / Foxp3 + T y CD8 +, mientras que la administración simultánea de B. Longum CECT 7347 ejerce efectos opuestos. Los animales sensibilizados con IFN-γ y alimentados con gliadina mostraron una alta infiltración celular, una menor anchura de las vellosidades y una altura de enterocitos. Los animales sensibilizados también mostraron una mayor expresión de ARNm de NFκB y producción de TNF-α en secciones de tejido. La administración de B. longum CECT 7347 aumentó la expresión de NFκB y de IL-10, pero redujo la producción de TNF-α en el modelo de enteropatía. En animales alimentados con gliadina sensibilizados, aumentaron las células T CD4 +, CD4 + / Foxp3 + y CD8 +, mientras que la administración de B. longum CECT 7347 redujo las poblaciones de células CD4 + y CD4 + / Foxp3 + y aumentó las poblaciones de células T CD8 +. La cepa bifidobacteriana administrada representó entre el 75 y el 95% del total de las bifidobacterias aisladas de todos los grupos tratados, y no se detectó translocación a los órganos. Estos hallazgos indican que B. longum atenúa la producción de citoquinas inflamatorias y la respuesta inmune mediada por células T CD4 + en un modelo animal de enteropatía inducida por gliadina.

Para desentrañar el posible papel de las interacciones entre los péptidos de gliadina y bacterias intestinales específicas, se ha estudiado la respuesta de las células epiteliales intestinales (Caco-2) a la gliadina sometida a digestión gastrointestinal en presencia o ausencia de Bifidobacterium longum CECT 7347. Los cambios en el proteoma de las células Caco-2 se determinaron mediante 2DE y MALDI-TOF. Gliadinas digeridas sin B. longum alteraron la expresión de un número mayor de proteínas que en presencia de la bacteria (21 versus 9), y estas proteínas participaron en la desorganización del citoesqueleto celular, la inflamación y la apoptosis. Las gliadinas digeridas en presencia de la bacteria influyeron en la producción de proteínas involucradas en la homeostasis del calcio y la función y la supervivencia celular. Por lo tanto, B. longum CECT 7347 podría mejorar la toxicidad de la gliadina y modificar las respuestas de las células epiteliales intestinales a la exposición a la gliadina[127].

Vitaminas y minerales

La ferropenia y la anemia ferropénica son las alteraciones analíticas más frecuentes en la enfermedad celíaca. La anemia está causada por un déficit de absorción de hierro y de folato en el intestino proximal y por las pérdidas ocultas de sangre a través del intestino[128]. Es característica la falta de respuesta al tratamiento con hierro oral de dicha anemia[129]. Ante toda anemia ferropénica de origen oscuro, especialmente si no responde bien al tratamiento sustitutivo con hierro vía oral, debería valorarse la presencia de una enfermedad celíaca. La malabsorción de vitamina K liposoluble a nivel del yeyuno determina alteraciones en la coagulación, favoreciendo los sangrados, pudiendo agravar así, la anemia preexistente. Puede evidenciarse hipoesplenismo, con trombocitopenia, deformación de los eritrocitos o atrofia esplénica, hasta en el 50% de pacientes con enfermedad celíaca. Se desconoce el mecanismo de esta afectación. En la mayoría de los casos, estos síntomas remiten después de instaurada la dieta libre de gluten.

El único tratamiento disponible para la enfermedad celíaca es la adherencia de por vida a la dieta sin gluten. Sin embargo, esta dieta puede llevar a un posible desequilibrio de nutrientes que resulta en una calidad nutricional inadecuada de la dieta. La dieta libre de gluten es pobre en fibra alimentaria debido, en particular, a la necesidad de evitar varios tipos de alimentos naturalmente ricos en fibra (es decir, granos) y al bajo contenido de fibra del producto sin gluten que generalmente se hace con almidones y / o harinas refinadas. Los micronutrientes también son pobres, en particular vitaminas D, B12 y folato, además de algunos minerales como hierro, zinc, magnesio y calcio. Además, una ingesta inadecuada de macronutrientes relacionada principalmente con el hecho de evitar el gluten, a menudo deja atrás la importancia de la calidad nutricional de la elección. En particular, se encuentra un mayor contenido de ácidos grasos tanto saturados como hidrogenados y un aumento en el índice glucémico y la carga glucémica de la comida. A pesar de que la dieta libre de gluten es necesaria en el tratamiento de la enfermedad celíaca y la atención se centra en evitar el gluten, se debe considerar la evaluación de la calidad nutricional de la dieta. Además, se podrían desarrollar estrategias educativas basadas en la relación entre los nutrientes y los alimentos y la salud humana para optimizar el enfoque terapéutico en pacientes celíacos[130].



[1] Ludvigsson JF, Leffler DA, Bai JC, Biagi F, Fasano A, Green PH, Hadjivassiliou M, Kaukinen K, Kelly CP, Leonard JN, Lundin KE, Murray JA, Sanders DS, Walker MM, Zingone F, Ciacci C. The Oslo definitions for coeliac disease and related terms.  Gut. 2013 Jan;62(1):43-52.

[2] Husby S, Koletzko S, Korponay-Szabó IR, Mearin ML, Phillips A, Shamir R, Troncone R, Giersiepen K, Branski D, Catassi C, Lelgeman M, Mäki M, Ribes-Koninckx C, Ventura A, Zimmer KP; ESPGHAN Working Group on Coeliac Disease  Diagnosis; ESPGHAN Gastroenterology Committee; European Society for Pediatric Gastroenterology, Hepatology, and Nutrition. European Society for Pediatric Gastroenterology, Hepatology, and Nutrition guidelines for the diagnosis of coeliac disease. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2012 Jan;54(1):136-60.

[3] Singh P, Arora A, Strand TA, Leffler DA, Catassi C, Green PH, et al. . Global prevalence of celiac disease: systematic review and meta-analysis. Clin Gastroenterol Hepatol 2018 16:823–36.e2.

[4] Rubio-Tapia A, Kyle RA, Kaplan EL, Johnson DR, Page W, Erdtmann F, et al. . Increased prevalence and mortality in undiagnosed celiac disease. Gastroenterology 2009 137:88–93.

[5] Godfrey JD, Brantner TL, Brinjikji W, Christensen KN, Brogan DL, Van Dyke CT, et al. . Morbidity and mortality among older individuals with undiagnosed celiac disease. Gastroenterology 2010 139:763–9.

[6] Green PHR, Stavropoulos SN, Panagi SG, Goldstein SL, McMahon DJ, Absan H, et al. . Characteristics of adult celiac disease in the USA: results of a national survey. Am J Gastroenterol 2001 96:126–31.

[7] Kaukinen K, Peraaho M, Lindfors K, Partanen J, Woolley N, Pikkarainen P, et al. . Persistent small bowel mucosal villous atrophy without symptoms in coeliac disease. Aliment Pharmacol Therapeut 2007 25:1237–45.

[8] Jericho H, Guandalini S. Extra-intestinal manifestation of celiac disease in children. Nutrients 2018 10:755.

[9] Nurminen S, Kivela L, Huhtala H, Kaukinen K, Kurppa K. Extraintestinal manifestations were common in children with coeliac disease and were more prevalent in patients with more severe clinical and histological presentation. Acta Paediatr 2018 107:1–7.

[10] Smith LB, Lynch KF, Kurppa K, Koletzko S, Krischer J, Liu E, et al. . Psychological manifestations of celiac disease autoimmunity in young children. Pediatrics 2017 139:e20162848.

[11] Assa A, Frenkel-Nir Y, Tzur D, Katz LH, Shamir R. Large population study shows that adolescents with celiac disease have an increased risk of multiple autoimmune and nonautoimmune comorbidities. Acta Paediatr 2017 106:967–72.

[12] Stordal K, Bakken IJ, Suren P, Stene LC. Epidemiology of coeliac disease and comorbidity in Norwegian children. J Pediatr Gastroenterol Nutr 2013 57:467–71.

[13] Canova C, Pitter G, Ludvigsson JF, Romor P, Zanier L, Zanotti R, et al. . Celiac disease and risk of autoimmune disorders: a population-based matched birth cohort study. J Pediatr 2016 174:146–52 e1.

[14] Hagopian W, Lee HS, Liu E, Rewers M, She JX, Ziegler AG, et al. . Co-occurrence of type 1 diabetes and celiac disease autoimmunity. Pediatrics 2017 140:e20171305.

[15] Elfstrom P, Sundstrom J, Ludvigsson JF. Systematic review with meta-analysis: associations between coeliac disease and type 1 diabetes. Aliment Pharmacol Ther 2014 40:1123–32.

[16] Meloni G, Dore A, Fanciulli G, Tanda F, Bottazzo GF. Subclinical coeliac disease in schoolchildren from northern Sardinia. Lancet 1999 353:37.

[17] Meloni GF, Tomasi PA, Bertoncelli A, Fanciulli G, Delitala G, Meloni T. Prevalence of silent celiac disease in patients with autoimmune thyroiditis from Northern Sardinia. J Endocrinol Invest 2001 24:298–302.

[18] Lundin KE, Wijmenga C. Coeliac disease and autoimmune disease-genetic overlap and screening. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2015 12:507–15.

[19] Alshiekh S, Zhao LP, Lernmark A, Geraghty DE, Naluai AT, Agardh D. Different DRB1*03:01-DQB1*02:01 haplotypes confer different risk for celiac disease. HLA 2017 90:95–101.

[20] Lundin KE, Nilsen EM, Scott HG, Loberg EM, Gjoen A, Bratlie J, et al. . Oats induenfermedad celíaca villous atrophy in coeliac disease. Gut 2003 52:1649–52.

[21] Arentz-Hansen H, Fleckenstein B, Molberg O, Scott H, Koning F, Jung G, et al. . The molecular basis for oat intolerance in patients with celiac disease. PLoS Med 2004 1:e1.

[22] Hardy MY, Tye-Din JA, Stewart JA, Schmitz F, Dudek NL, Hanchapola I, et al. . Ingestion of oats and barley in patients with celiac disease mobilizes cross-reactive T cells activated by avenin peptides and immuno-dominant hordein peptides. J Autoimmun 2015 56:56–65.

[23] Pinto-Sanchez MI, Causada-Calo N, Bercik P, Ford AC, Murray JA, Armstrong D, et al. . Safety of adding oats to a gluten-free diet for patients with celiac disease: systematic review and meta-analysis of clinical and observational studies. Gastroenterology 2017 153:395–409 e3.

[24] Ciacci C, Ciclitira P, Hadjivassiliou M, Kaukinen K, Ludvigsson JF, McGough N, et al. . The gluten-free diet and its current application in coeliac disease and dermatitis herpetiformis. U Eur Gastroenterol J 2015 3:121–35.

[25] Comino I, Real A, de Lorenzo L, Cornell H, Lopez-Casado MA, Barro F, et al. . Diversity in oat potential immunogenicity: basis for the selection of oat varieties with no toxicity in coeliac disease. Gut 2011 60:915–22.

[26] Lionetti E, Gatti S, Pulvirenti A, Catassi C. Celiac disease from a global perspective. Best Pract Res Clin Gastroenterol 2015 29:365–79.

[27] Yuan J, Zhou C, Gao J, Li J, Yu F, Lu J, et al. . Prevalence of celiac disease autoimmunity among adolescents and young adults in China. Clin Gastroenterol Hepatol 2017 15:1572–9 e1.

[28] Rubio-Tapia A, Ludvigsson JF, Brantner TL, Murray JA, Everhart JE. The prevalence of celiac disease in the United States. Am J Gastroenterol 2012 107:1538–44.

[29] Jansson-Knodell CL, King KS, Larson JJ, Van Dyke CT, Murray JA, Rubio-Tapia A. gender-based differences in a population-based cohort with celiac disease: more alike than unalike. Dig Dis Sci. (2018) 63:184–92.

[30] Greco L, Romino R, Coto I, Di Cosmo N, Percopo S, Maglio M, et al. . The first large population based twin study of coeliac disease. Gut 2002 50:624–8.

[31] Kondrashova A, Mustalahti K, Kaukinen K, Viskari H, Volodicheva V, Haapala AM, et al. . Lower economic status and inferior hygienic environment may protect against celiac disease. Ann Med 2008 40:223–31.

[32] Ivarsson A, Persson LA, Nystrom L, Ascher H, Cavell B, Danielsson L, et al. . Epidemic of coeliac disease in Swedish children. Acta Paediatr 2000 89:165–71.

[33] Ivarsson A, Hernell O, Stenlund H, Persson LA. Breast-feeding protects against celiac disease. Am J Clin Nutr 2002 75:914–21.

[34] Norris JM, Barriga K, Hoffenberg EJ, Taki I, Miao D, Haas JE, et al. . Risk of celiac disease autoimmunity and timing of gluten introduction in the diet of infants at increased risk of disease. JAMA 2005 293:2343–51.

[35] Chmielewska A, Piescik-Lech M, Szajewska H, Shamir R. Primary prevention of celiac disease: environmental factors with a focus on early nutrition. Ann Nutr Metabo 2015 67 (Suppl. 2):43–50.

[36] Szajewska H, Shamir R, Chmielewska A, Piescik-Lech M, Auricchio R, Ivarsson A, et al. . Systematic review with meta-analysis: early infant feeding and coeliac disease–update 2015. Aliment Pharmacol Ther 2015 41:1038–54.

[37] Aronsson CA, Lee HS, Liu E, Uusitalo U, Hummel S, Yang J, et al. . Age at gluten introduction and risk of celiac disease. Pediatrics 2015 135:239–45.

[38] Ivarsson A, Myleus A, Norstrom F, van der Pals M, Rosen A, Hogberg L, Danielsson L, et al. . Prevalence of childhood celiac disease and changes in infant feeding. Pediatrics 2013 131:e687–94.

[39] Myleus A, Ivarsson A, Webb C, Danielsson L, Hernell O, Hogberg L, et al. . Celiac disease revealed in 3% of Swedish 12-year-olds born during an epidemic. J Pediatr Gastroenterol Nutr 2009 49:170–6.

[40] Andren Aronsson C, Lee HS, Koletzko S, Uusitalo U, Yang J, Virtanen SM, et al. . Effects of gluten intake on risk of celiac disease: a case-control study on a swedish birth cohort. Clin Gastroenterol Hepatol 2016 14:403–9 e3.

[41] Crespo-Escobar P, Mearin ML, Hervas D, Auricchio R, Castillejo G, Gyimesi J, et al. . The role of gluten consumption at an early age in celiac disease development: a further analysis of the prospective PreventCD cohort study. Am J Clin Nutr 2017 105:890–6.

[42] Myleus A, Hernell O, Gothefors L, Hammarstrom ML, Persson LA, Stenlund H, et al. . Early infections are associated with increased risk for celiac disease: an incident case-referent study. BMC Pediatr 2012 12:194.

[43] Canova C, Zabeo V, Pitter G, Romor P, Baldovin T, Zanotti R, et al. . Association of maternal education, early infections, antibiotic use with celiac disease: a population-based birth cohort study in northeastern Italy. Am J Epidemiol 2014 180:76–85.

[44] Marild K, Kahrs CR, Tapia G, Stene LC, Stordal K. Infections and risk of celiac disease in childhood: a prospective nationwide cohort study. Am J Gastroenterol 2015 110:1475–84.

[45] Kemppainen KM, Lynch KF, Liu E, Lonnrot M, Simell V, Briese T, et al. . Factors that increase risk of celiac disease autoimmunity after a gastrointestinal infection in early life. Clin Gastroenterol Hepatol 2017 15:694–702 e5.

[46] Stene LC, Honeyman MC, Hoffenberg EJ, Haas JE, Sokol RJ, Emery L, et al. . Rotavirus infection frequency and risk of celiac disease autoimmunity in early childhood: a longitudinal study. Am J Gastroenterol 2006 101:2333–40.

[47] Lahdeaho ML, Lehtinen M, Rissa HR, Hyoty H, Reunala T, Maki M. Antipeptide antibodies to adenovirus E1b protein indicate enhanced risk of celiac disease and dermatitis herpetiformis. Int Arch Allergy Immunol 1993 101:272–6.

[48] Kagnoff MF, Paterson YJ, Kumar PJ, Kasarda DD, Carbone FR, Unsworth DJ, et al. . Evidence for the role of a human intestinal adenovirus in the pathogenesis of coeliac disease. Gut 1987 28:995–1001.

[49] Lahdeaho ML, Parkkonen P, Reunala T, Maki M, Lehtinen M. Antibodies to E1b protein-derived peptides of enteric adenovirus type 40 are associated with celiac disease and dermatitis herpetiformis. Clin Immunol Immunopathol 1993 69:300–5.

[50] Zanoni G, Navone R, Lunardi C, Tridente G, Bason C, Sivori S, et al. . In celiac disease, a subset of autoantibodies against transglutaminase binds toll-like receptor 4 and induces activation of monocytes. PLoS Med 2006 3:e358.

[51] Bouziat R, Hinterleitner R, Brown JJ, Stencel-Baerenwald JE, Ikizler M, Mayassi T, et al. . Reovirus infection triggers inflammatory responses to dietary antigens and development of celiac disease. Science 2017 356:44–50.

[52] Marild K, Ye W, Lebwohl B, Green PH, Blaser MJ, Card T, et al. . Antibiotic exposure and the development of coeliac disease: a nationwide case-control study. BMC Gastroenterol 2013 13:109.

[53] Decker E, Engelmann G, Findeisen A, Gerner P, Laass M, Ney D, et al. Cesarean delivery is associated with celiac disease but not inflammatory bowel disease in children. Pediatrics 2010 125:e1433–40.

[54] Marild K, Stephansson O, Montgomery S, Murray JA, Ludvigsson JF. Pregnancy outcome and risk of celiac disease in offspring: a nationwide case-control study. Gastroenterology 2012 142:39–45 e3.

[55] Marild K, Ludvigsson J, Sanz Y, Ludvigsson JF. Antibiotic exposure in pregnancy and risk of coeliac disease in offspring: a cohort study. BMC Gastroenterol 2014 14:75.

[56] Agardh D, Lee HS, Kurppa K, Simell V, Aronsson CA, Jorneus O, et al. . Clinical features of celiac disease: a prospective birth cohort. Pediatrics 2015 135:627–34.

[57] Sevelsted A, Stokholm J, Bonnelykke K, Bisgaard H. Cesarean section and chronic immune disorders. Pediatrics 2015 135:e92–8.

[58] Forsberg G, Fahlgren A, Horstedt P, Hammarstrom S, Hernell O, Hammarstrom ML. Presence of bacteria and innate immunity of intestinal epithelium in childhood celiac disease. Am J Gastroenterol 2004 99:894–904.

[59] Ou G, Hedberg M, Hörstedt P, Baranov V, Forsberg G, Drobni M, et al. . Proximal small intestinal microbiota and identification of rod-shaped bacteria associated with childhood celiac disease. Am J Gastroenterol 2009 104:3058–67.

[60] Verdu EF, Galipeau HJ, Jabri B. Novel players in coeliac disease pathogenesis: role of the gut microbiota. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2015 12:497–506.

[61] Sanchez E, Donat E, Ribes-Koninckx C, Fernandez-Murga ML, Sanz Y. Duodenal-mucosal bacteria associated with celiac disease in children. Appl Environ Microbiol 2013 79:5472–9.

[62] Pozo-Rubio T, Olivares M, Nova E, De Palma G, M2ujico JR, Ferrer MD, et al. . Immune development and intestinal microbiota in celiac disease. Clin Dev Immunol 2012 2012:654143.

[63] Wacklin P, Laurikka P, Lindfors K, Collin P, Salmi T, Lahdeaho ML, et al. . Altered duodenal microbiota composition in celiac disease patients suffering from persistent symptoms on a long-term gluten-free diet. Am J Gastroenterol 2014 109:1933–41.

[64] Verdu EF, Mauro M, Bourgeois J, Armstrong D. Clinical onset of celiac disease after an episode of Campylobacter jejuni enteritis. Can J Gastroenterol 2007 21:453–5.

[65] Sanchez E, Nadal I, Donat E, Ribes-Koninckx C, Calabuig M, Sanz Y. Reduced diversity and increased virulence-gene carriage in intestinal enterobacteria of coeliac children. BMC Gastroenterol 2008 8:50.

[66] Sanchez E, Laparra JM, Sanz Y. Discerning the role of Bacteroides fragilis in celiac disease pathogenesis. Appl Environ Microbiol 2012 78:6507–15.

[67] Sanchez E, Ribes-Koninckx C, Calabuig M, Sanz Y. Intestinal Staphylococcus spp. and virulent features associated with coeliac disease. J Clin Pathol 2012 65:830–4.

[68] D'Argenio V, Casaburi G, Precone V, Pagliuca C, Colicchio R, Sarnataro D, et al. . Metagenomics reveals dysbiosis and a potentially pathogenic n. flavescens strain in duodenum of adult celiac patients. Am J Gastroenterol 2016 111:879–90.

[69] Narang M, Puri AS, Sachdeva S, Singh J, Kumar A, Saran RK. Celiac disease and Helicobacter pylori infection in children: is there any association? J Gastroenterol Hepatol 2017 32:1178–82.

[70] Ciacci C, Squillante A, Rendina D, Limauro S, Bencivenga C, Labanca F, et al. . Helicobacter pylori infection and peptic disease in coeliac disease. Eur J Gastroenterol Hepatol 2000 12:1283–7.

[71] Lebwohl B, Blaser MJ, Ludvigsson JF, Green PH, Rundle A, Sonnenberg A, et al. . Decreased risk of celiac disease in patients with Helicobacter pylori colonization. Am J Epidemiol 2013 178:1721–30.

[72] Konturek PC, Karczewska E, Dieterich W, Hahn EG, Schuppan D. Increased prevalence of Helicobacter pylori infection in patients with celiac disease. Am J Gastroenterol 2000 95:3682–3.

[73] Dore MP, Salis R, Loria MF, Villanacci V, Bassotti G, Pes GM. Helicobacter pylori infection and occurrence of celiac disease in subjects HLA-DQ2/DQ8 positive: a prospective study. Helicobacter 2018 23:e12465.

[74] Aydogdu S, Cakir M, Yuksekkaya HA, Tumgor G, Baran M, Arikan C, et al. . Helicobacter pylori infection in children with celiac disease. Scand J Gastroenterol 2008 43:1088–93.

[75] Caminero A, Nistal E, Herrán AR, Pérez-Andrés J, Ferrero MA, Vaquero Ayala L, et al. . Differences in gluten metabolism among healthy volunteers, coeliac disease patients and first-degree relatives. Br J Nutr 2015 114:1157–67.

[76] Caminero A, Galipeau HJ, McCarville JL, Johnston CW, Bernier SP, Russell AK, et al. . Duodenal bacteria from patients with celiac disease and healthy subjects distinctly affect gluten breakdown and immunogenicity. Gastroenterology 2016 151:670–83.

[77] Caminero A, Herrán AR, Nistal E, Pérez-Andrés J, Vaquero L, Vivas S, et al. . Diversity of the cultivable human gut microbiome involved in gluten metabolism: isolation of microorganisms with potential interest for coeliac disease. FEMS Microbiol Ecol 2014 88:309–19.

[78] Sellitto M, Bai G, Serena G, Fricke WF, Sturgeon C, Gajer P, et al. . Proof of concept of microbiome-metabolome analysis and delayed gluten exposure on celiac disease autoimmunity in genetically at-risk infants. PLoS ONE 2012 7:e33387.

[79] Olivares M, Neef A, Castillejo G, Palma GD, Varea V, Capilla A, et al. . The HLA-DQ2 genotype selects for early intestinal microbiota composition in infants at high risk of developing coeliac disease. Gut 2015 64:406–17.

[80] Olivares M, Benitez-Paez A, de Palma G, Capilla A, Nova E, Castillejo G, et al. Increased prevalence of pathogenic bacteria in the gut microbiota of infants at risk of developing celiac disease: the proficel study. Gut Microbes 2018 9:1–8.

[81] Palma GD, Capilla A, Nova E, Castillejo G, Varea V, Pozo T, et al. . Influence of milk-feeding type and genetic risk of developing coeliac disease on intestinal microbiota of infants: the PROFICEL study. PLoS ONE 2012 7:e30791.

[82] Olivares M, Walker AW, Capilla A, Benítez-Páez A, Palau F, Parkhill J, et al. . Gut microbiota trajectory in early life may predict development of celiac disease. Microbiome 2018 6:36.

[83] Rintala A, Riikonen I, Toivonen A, Pietilä S, Munukka E, Pursiheimo JP, et al. . Early fecal microbiota composition in children who later develop celiac disease and associated autoimmunity. Scand J Gastroenterol 2018 53:403–9.

[84] Carmody RN, Gerber GK, Luevano JM, Gatti DM, Somes L, Svenson KL, et al. . Diet dominates host genotype in shaping the murine gut microbiota. Cell Host Microbe 2015 17:72–84.

[85] Rothschild D, Weissbrod O, Barkan E, Kurilshikov A, Korem T, Zeevi D, et al. . Environment dominates over host genetics in shaping human gut microbiota. Nature 2018 555:210–5.

[86] de Kauwe AL, Chen Z, Anderson RP, Keech CL, Price JD, Wijburg O, et al. . Resistance to celiac disease in humanized HLA-DR3-DQ2-transgenic mice expressing specific anti-gliadin CD4+ T cells. J Immunol 2009 182:7440–50.

[87] Korneychuk N, Meresse B, Cerf-Bensussan N. Lessons from rodent models in celiac disease. Mucosal Immunol 2015 8:18–28.

[88] Freitag TL, Loponen J, Messing M, Zevallos V, Andersson LC, Sontag-Strohm T, et al. . Testing safety of germinated rye sourdough in a celiac disease model based on the adoptive transfer of prolamin-primed memory T cells into lymphopenic mice. Am J Physiol 2014 306:G526–34.

[89] Freitag TL, Rietdijk S, Junker Y, Popov Y, Bhan AK, Kelly CP, et al. . Gliadin-primed CD4+CD45RBlowCD25- T cells drive gluten-dependent small intestinal damage after adoptive transfer into lymphopenic mice. Gut 2009 58:1597–605.

[90] DePaolo RW, Abadie V, Tang F, Fehlner-Peach H, Hall JA, Wang W, et al. . Co-adjuvant effects of retinoic acid and IL-15 induce inflammatory immunity to dietary antigens. Nature 2011 471:220–4.

[91] Verdu EF, Huang X, Natividad J, Lu J, Blennerhassett PA, David CS, et al. . Gliadin-dependent neuromuscular and epithelial secretory responses in gluten-sensitive HLA-DQ8 transgenic mice. Am J Physiol 2008 294:G217–25.

[92] Galipeau HJ, Rulli NE, Jury J, Huang X, Araya R, Murray JA, et al. . Sensitization to gliadin induces moderate enteropathy and insulitis in nonobese diabetic-DQ8 mice. J Immunol 2011 187:4338–46.

[93] Black KE, Murray JA, David CS. HLA-DQ determines the response to exogenous wheat proteins: a model of gluten sensitivity in transgenic knockout mice. J Immunol 2002 169:5595–600.

[94] Galipeau HJ, McCarville JL, Huebener S, Litwin O, Meisel M, Jabri B, et al. . Intestinal microbiota modulates gluten-induced immunopathology in humanized mice. Am J Pathol 2015 185:2969–82.

[95] Shan L, Molberg O, Parrot I, et al. Structural basis for gluten intolerance in celiac sprue. Science 2002; 297: 2275–2279.

[96] Janssen G, Christis C, Kooy-Winkelaar Y, et al. Ineffective degradation of immunogenic gluten epitopes by currently available digestive enzyme supplements. PLoS One 2015; 10: e0128065.

[97] Tack GJ, van de Water JM, Bruins MJ, Kooy-Winkelaar EM, van Bergen J, Bonnet P, Vreugdenhil AC, Korponay-Szabo I, Edens L, von Blomberg BM, Schreurs MW, Mulder CJ, Koning F. Consumption of gluten with gluten-degrading enzyme by celiac patients: a pilot-study. World J Gastroenterol. 2013 Sep 21;19(35):5837-47.

[98] Mitea C, Havenaar R, Drijfhout JW, et al. Efficient degradation of gluten by a prolyl endoprotease in a gastrointestinal model: implications for coeliac disease. Gut 2008; 57: 25–32.

[99] Stepniak D, Spaenij-Dekking L, Mitea C, Moester M, de Ru A, Baak-Pablo R, van  Veelen P, Edens L, Koning F. Highly efficient gluten degradation with a newly identified prolyl endoprotease: implications for celiac disease. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2006 Oct;291(4):G621-9.

[100] Montserrat V, Bruins MJ, Edens L, Koning F. Influence of dietary components on Aspergillus niger prolyl endoprotease mediated gluten degradation. Food Chem. 2015 May 1;174:440-5.

[101] Salden BN, Monserrat V, Troost FJ, Bruins MJ, Edens L, Bartholomé R, Haenen GR, Winkens B, Koning F, Masclee AA. Randomised clinical study: Aspergillus niger-derived enzyme digests gluten in the stomach of healthy volunteers. Aliment Pharmacol Ther. 2015 Aug;42(3):273-85.

[102] König J, Holster S, Bruins MJ, Brummer RJ. Randomized clinical trial: Effective gluten degradation by Aspergillus niger-derived enzyme in a complex meal setting. Sci Rep. 2017 Oct 12;7(1):13100.

[103] Rees D, Holtrop G, Chope G, Moar KM, Cruickshank M, Hoggard N. A randomised, double-blind, cross-over trial to evaluate bread, in which gluten has been pre-digested by prolyl endoprotease treatment, in subjects self-reporting benefits of adopting a gluten-free or low-gluten diet. Br J Nutr. 2018 Mar;119(5):496-506.

[104] Pozo-Rubio T, de Palma G, Mujico JR, Olivares M, Marcos A, Acuña MD, Polanco I, Sanz Y, Nova E. Influence of early environmental factors on lymphocyte subsets and gut microbiota in infants at risk of celiac disease; the PROFICEL study. Nutr Hosp. 2013 Mar-Apr;28(2):464-73.

[105] Food and Agriculture Organization and World Health Organization Expert Consultation. 2001. Evaluation of health and nutritional properties of powder milk and live lactic acid bacteria. Food and Agriculture Organization of the United Nations and World Health Organization, Córdoba, Argentina.

[106] Pinto-Sánchez MI, Smecuol EC, Temprano MP, Sugai E, González A, Moreno ML, Huang X, Bercik P, Cabanne A, Vázquez H, Niveloni S, Mazure R, Mauriño E, Verdú EF, Bai JC. Bifidobacterium infantis NLS Super Strain Reduces the Expression of α-Defensin-5, a Marker of Innate Immunity, in the Mucosa of Active Celiac Disease Patients. J Clin Gastroenterol. 2017 Oct;51(9):814-817.

[107] Tojo R, Suarez A, Clemente MG, de los Reyes-Gavilan CG, Margolles A, Gueimonde M, Ruas-Madiedo P. Intestinal microbiota in health and disease: role of bifidobacteria in gut homeostasis. World J Gastroenterol 2014 20:15163–15176.

[108] Golfetto L, de Senna FD, Hermes J, Beserra BT, Franca Fda S, Martinello F. Lower bifidobacteria counts in adult patients with celiac disease on a gluten-free diet. Arq Gastroenterol 2014 51:139–143.

[109] Quagliariello A, Aloisio I, Bozzi Cionci N, Luiselli D, D'Auria G, Martinez-Priego L, Perez-Villarroya D, Langerholc T, Primec M, Micetic-Turk D, Di Gioia D. Effect of Bifidobacterium breve on the intestinal microbiota of coeliac children on a gluten free diet: a pilot study. Nutrients 2016 8:E660.

[110] Sakurai T, Yamada A, Hashikura N, Odamaki T, Xiao JZ. Degradation of food-derived opioid peptides by bifidobacteria. Benef Microbes. 2018 Jun 15;9(4):675-682.

[111] Olivares M, Walker AW, Capilla A, Benítez-Páez A, Palau F, Parkhill J, Castillejo G, Sanz Y. Gut microbiota trajectory in early life may predict development of celiac disease. Microbiome. 2018 Feb 20;6(1):36.

[112] Annaházi A, Molnár T, Farkas K, Rosztóczy A, Izbéki F, Gecse K, Inczefi O, Nagy F, Földesi I, Szűcs M, Dabek M, Ferrier L, Theodorou V, Bueno L, Wittmann T, Róka R. Fecal MMP-9: a new noninvasive differential diagnostic and activity marker in ulcerative colitis. Inflamm Bowel Dis 2013 19:316–312.

[113] Bustos D, Negri G, De Paula JA, Di Carlo M, Yapur V, Facente A, De Paula A. Colonic proteinases: increased activity in patients with ulcerative colitis. Medicina (B Aires) 1998 58:262–264.

[114] Motta J, Bermúdez-Humarán L, Deraison C, Martin L, Rolland C, Rousset P, Boue J, Dietrich G, Chapman K, Kharrat P, Vinel J, Alric L, Mas E, Sallenave J, Langella P, Vergnolle N. Food-grade bacteria expressing elafin protect against inflammation and restore colon homeostasis. Sci Transl Med 2012 4:158ra144.

[115] Galipeau HJ, Wiepjes M, Motta JP, Schulz JD, Jury J, Natividad JM, Pinto-Sanchez I, Sinclair D, Rousset P, Martin-Rosique R, Bermudez-Humaran L, Leroux JC, Murray JA, Smecuol E, Bai JC, Vergnolle N, Langella P, Verdu EF. Novel role of the serine protease inhibitor elafin in gluten-related disorders. Am J Gastroenterol 2014 109:748–756.

[116] Ivanov D, Emonet C, Foata F, Affolter M, Delley M, Fisseha M, Blum-Sperisen S, Kochhar S, Arigoni F. A serpin from the gut bacterium Bifidobacterium longum inhibits eukaryotic elastase-like serine proteases. J Biol Chem 2006 281:17246–17252.

[117] Turroni F, Foroni E, Motherway MOC, Bottacini F, Giubellini V, Zomer A, Ferrarini A, Delledonne M, Zhang Z, van Sinderen D. Characterization of the serpin-encoding gene of Bifidobacterium breve 210B. Appl Environ Microbiol 2010 76:3206–3219.

[118] Róka R, Rosztóczy A, Leveque M, Izbéki F, Nagy F, Molnár T, Lonovics J, Garcia-Villar R, Fioramonti J, Wittmann T, Bueno L. A pilot study of fecal serine-protease activity: a pathophysiologic factor in diarrhea-predominant irritable bowel syndrome. Clin Gastroenterol Hepatol 2007 5:550–555.

[119] Gecse K, Roka R, Ferrier L, Leveque M, Eutamene H, Cartier C, Ait-Belgnaoui A, Rosztoczy A, Izbeki F, Fioramonti J. Increased faecal serine protease activity in diarrhoeic IBS patients: a colonic lumenal factor impairing colonic permeability and sensitivity. Gut 2008 57:591–599.

[120] Laparra JM, Sanz Y. Bifidobacteria inhibit the inflammatory response induced by gliadins in intestinal epithelial cells via modifications of toxic peptide generation during digestion. J Cell Biochem. 2010 Mar 1;109(4):801-7.

[121] De Palma G, Cinova J, Stepankova R, Tuckova L, Sanz Y. Pivotal Advance: Bifidobacteria and Gram-negative bacteria differentially influence immune responses in the proinflammatory milieu of celiac disease. J Leukoc Biol. 2010 May;87(5):765-78.

[122] Collado MC, Donat E, Ribes-Koninckx C, Calabuig M, Sanz Y. Imbalances in faecal and duodenal Bifidobacterium species composition in active and non-active  coeliac disease. BMC Microbiol. 2008 Dec 22;8:232.

[123] Olivares M, Castillejo G, Varea V, Sanz Y. Double-blind, randomised, placebo-controlled intervention trial to evaluate the effects of Bifidobacterium  longum CECT 7347 in children with newly diagnosed coeliac disease. Br J Nutr. 2014 Jul 14;112(1):30-40.

[124] Laparra JM, Olivares M, Sanz Y. Oral administration of Bifidobacterium longum  CECT 7347 ameliorates gliadin-induced alterations in liver iron mobilisation. Br  J Nutr. 2013 Nov;110(10):1828-36.

[125] Olivares M, Laparra M, Sanz Y. Oral administration of Bifidobacterium longum CECT 7347 modulates jejunal proteome in an in vivo gliadin-induced enteropathy animal model. J Proteomics. 2012 Dec 21;77:310-20.

[126] Laparra JM, Olivares M, Gallina O, Sanz Y. Bifidobacterium longum CECT 7347 modulates immune responses in a gliadin-induced enteropathy animal model. PLoS One. 2012;7(2):e30744.

[127] Olivares M, Laparra M, Sanz Y. Influence of Bifidobacterium longum CECT 7347 and gliadin peptides on intestinal epithelial cell proteome. J Agric Food Chem. 2011 Jul 27;59(14):7666-71.

[128] Consani S. Enfermedad celíaca. Un desafío en Medicina Interna. Arch Med Interna 2010; XXXII(Supl 1):S35-S46 S47.

[129] Fasano A, Catassi C. Current approaches to diagnosis and treatment of celiac disease: an evolving spectrum. Gastroenterology. 2001 Feb;120(3):636-51.

[130] Vici G, Belli L, Biondi M, Polzonetti V. Gluten free diet and nutrient deficiencies: A review. Clin Nutr. 2016 Dec;35(6):1236-1241.


Adaptógeno

El concepto de adaptógeno ya tiene más de 60 años y ha sido revisado a fondo en relación con la fisiología, la farmacología, la toxicología y los posibles usos en la medicina y la farmacosanación[1]. Originalmente definidas como sustancias "que aumentan la resistencia a un amplio espectro de factores dañinos (estresantes) de diferente naturaleza física, química y biológica"[2], los adaptógenos se consideran "reguladores metabólicos, que aumentan la capacidad de un organismo para adaptarse a los factores ambientales y evitar el daño causado por dichos factores"[3]. Algunas plantas adaptogénicas han sido utilizadas en la medicina tradicional china y en el Ayurveda durante siglos para promover la salud física y mental, mejorar los mecanismos de defensa del cuerpo y aumentar la longevidad.  El concepto reduccionista de una visión de la acción de los medicamentos basada en un solo receptor[4] parece ser insatisfactorio para los adaptógenos. El mecanismo ortésico o modelo alostérico permisivo de antagonismo agonista-dependiente, tal como se aplica a la teoría del receptor de la acción del fármaco, está limitado por la suposición de que sólo un receptor está involucrado en la actividad farmacológica de los adaptógenos. Además, estos modelos no consideran la posibilidad de que los adaptógenos modulen la expresión del receptor a través de otros mecanismos. Sin embargo, los adaptógenos exhiben una acción multiobjetivo y el uso compartido de un número de receptores diferentes, incluyendo receptores para corticosteroides, mineralocorticoides, progestina, estrógeno, serotonina (5-HT), N-metil-d-aspartato, y acetilcolina nicotínica, receptores tirosina cinasas, y muchos receptores G acoplados a la proteína[5].  Por lo tanto, la posibilidad de que numerosas interacciones en red molecular (con regulación de la retroalimentación de los sistemas neuroendocrino e inmunológico) contribuyan a la respuesta farmacológica general y den lugar a un antagonismo dependiente de los agonistas es la más adecuada para comprender los mecanismos de acción de los adaptógenos. Por lo tanto, la farmacología de los adaptógenos es un ejemplo típico de la farmacología en red[6][7].  La farmacología en red tiene el potencial de proporcionar tratamientos para enfermedades complejas, afecciones crónicas y síndromes, incluyendo su evolución fisiopatológica, donde los enfoques convencionales a menudo han sido decepcionantes[8][9][10]. Las respuestas al estrés adaptativo incluyen varias etapas e involucran múltiples redes moleculares en las que los receptores interactúan con los adaptógenos.

Withania somnifera, también conocida como Ashwagandha, ginseng indio y cereza de invierno, ha sido una hierba importante en los sistemas médicos ayurvédicos e indígenas durante más de 3.000 años. Históricamente, la planta se ha utilizado como afrodisíaco, tónico hepático, agente antiinflamatorio, astringente y, más recientemente, para tratar bronquitis, asma, úlceras, emaciación, insomnio y demencia senil. Los ensayos clínicos y la investigación en animales apoyan el uso de Ashwaganda para la ansiedad, los trastornos cognitivos y neurológicos, la inflamación y la enfermedad de Parkinson. Las propiedades quimiopreventivas de Ashwaganda lo convierten en un complemento potencialmente útil para los pacientes que se someten a radiación y quimioterapia. Ashwaganda también se utiliza terapéuticamente como un adaptógeno para pacientes con agotamiento nervioso, insomnio y debilidad debido al estrés, y como estimulante inmunológico en pacientes con recuentos bajos de glóbulos blancos.

Ashwagandha es un pequeño arbusto leñoso de la familia de las Solanáceas que crece unos dos pies de altura. Se puede encontrar creciendo en África, el Mediterráneo y la India. Como resultado de este amplio rango de crecimiento, existen considerables variaciones morfológicas y quimiotípicas en términos de especies locales. Sin embargo, los alcaloides primarios de las especies silvestres y cultivadas parecen ser los mismos. Las raíces son la parte principal de la planta utilizada terapéuticamente. Los frutos de color rojo brillante se cosechan a finales del otoño y las semillas se secan para plantarlas en la primavera siguiente.

El porcentaje de alcaloides en las raíces oscila entre 0,13 y 0,31%. Las raíces de Withania somnifera son de naturaleza alterativa, afrodisíaca, desobstruyente, diurética, narcótica, sedante y restauradora. La actividad farmacológica de la raíz se atribuye a los alcaloides y esteroides lactonas. Se ha informado de que el contenido total de alcaloides en las raíces de los tipos indios varía entre 0,13 y 0,3, aunque en otros lugares se han registrado rendimientos muy elevados (hasta el 4,3%). Muchos alcaloides bioquímicos heterogéneos, incluyendo colina, tropanol, pseudotopanol, cuscocina, 3- tigioyloxytropana, isopelletierina y varias otras lactosas esteroides. Se han aislado 12 alcaloides, 35 withanolides y varios sitoindósidos de las raíces de la planta. Un sitoindósido es un componente biológicamente activo conocido como withanolide que contiene una molécula de glucosa en carbono 27. La actividad farmacológica del ginseng indio se ha atribuido a dos withanolides principales, con ohaferina A y withanolide D. Se ha informado que la withaferina A es terapéuticamente activa con withanolide presente en las hojas. Además de alcaloides, las raíces contienen almidón, azúcares reductores, glucósidos, dulcitol, lápiz, un ácido y un compuesto neutro. Los aminoácidos reportados desde las raíces incluyen ácido aspártico, glicina, tirosina, alanina, ácido glutámico y cisteína[11].

Los efectos cerebrales de Ashwagandha sobre el cerebro son a partir de  GABA y tiene actividad mimética con efecto ansiolítico; inhibiendo la colinesterasa y por lo tanto reteniendo acetilcolina por más tiempo; disminución de la tolerancia a los efectos analgésicos de la morfina e inducción del crecimiento del axón y de la dendrita, resultando en la regeneración de la neuritis y la reconstrucción sináptica.

Los withanolides sirven como precursores hormonales importantes que pueden convertirse en hormonas fisiológicas humanas según sea necesario. Se cree que Ashwagandha es anfotérico; es decir, puede ayudar a regular procesos fisiológicos importantes. La teoría es que cuando hay un exceso de cierta hormona, el precursor de la hormona vegetal ocupa los sitios receptores de la membrana celular de modo que la hormona real no puede adherirse y ejercer su efecto. Si el nivel hormonal es bajo, la hormona vegetal ejerce un pequeño efecto. Ashwagandha también se considera un adaptógeno, que facilita la capacidad de resistir a los factores estresantes, y también tiene propiedades antioxidantes. Otros estudios han demostrado que la Ashwaganda tiene un efecto inmunoestimulador.

En un estudio en animales que evaluó las acciones ansiolíticas y antidepresivas de Ashwagandha en comparación con los productos farmacéuticos comúnmente prescritos, se administró un extracto de la raíz por vía oral a las ratas una vez al día durante cinco días. Los resultados se compararon con un grupo administrado con lorazepam benzodiazepina para la actividad ansiolítica y con el antidepresivo tricíclico imipramina para la investigación de antidepresivos. Tanto el grupo de Ashwagandha como el grupo de lorazepam demostraron niveles cerebrales reducidos de un marcador de ansiedad clínica. Ashwagandha también mostró un efecto antidepresivo comparable al inducido por la imipramina en las pruebas de "desesperación conductual" e "impotencia aprendida" inducidas por la natación forzada[12]. Otros estudios similares confirman estos resultados, dando apoyo al uso de Ashwagandha como un adaptógeno antiestrés[13][14][15].

El estrés crónico puede resultar en un número de condiciones fisiológicas adversas incluyendo déficit cognitivo, inmunosupresión, disfunción sexual, ulceración gástrica, irregularidades en la homeostasis de la glucosa, y cambios en los niveles de corticosterona en plasma. En un modelo de rata de estrés crónico se compararon los extractos de Withania somnifera y Panax ginseng por su capacidad para atenuar algunos efectos del estrés crónico. Ambos productos botánicos fueron capaces de disminuir el número y la gravedad de las úlceras inducidas por el estrés crónico, revertir la inhibición inducida por el estrés crónico del comportamiento sexual masculino e inhibir los efectos adversos del estrés crónico sobre la retención de las tareas aprendidas. Ambos botánicos también revirtieron la inmunosupresión inducida por el estrés crónico, pero sólo el extracto de Withania aumentó la actividad de los macrófagos peritoneales en las ratas. La actividad del extracto de Withania fue aproximadamente igual a la actividad del extracto de Panax ginseng. Withania somnifera, sin embargo, tiene una ventaja sobre el Panax ginseng en el sentido de que no parece provocar el síndrome de abuso de ginseng, una afección caracterizada por presión arterial alta, retención de agua, tensión muscular e insomnio[16].

Las raíces de la planta Withania somnifera Dunal (familia, Solanaceae), conocida como Ashwagandha en Ayurveda se clasifican como rasayanas, un grupo de medicamentos derivados de plantas que tienen fama de promover la salud y la longevidad al aumentar las defensas contra las enfermedades, detener el proceso de envejecimiento, revitalizar el cuerpo en condiciones debilitadas, aumentar la capacidad del individuo para resistir los factores ambientales adversos y crear una sensación de bienestar mental[17].

Las propiedades atribuidas a las rasayanas ayurvédicas son notablemente similares a las que se dice que están presentes en los adaptógenos que parecen aumentar la resistencia inespecífica del cuerpo contra diversos factores estresantes y ayudar a promover los estados físicos y mentales del individuo[18].

Varias investigaciones anteriores han indicado que Withania somnifera tiene un perfil de actividad que está en consonancia con la actividad antiestrés y antioxidante. Así, Withania somnifera, o sus principales principios activos, tienen acciones antiinflamatorias, antitumorales y de sensibilización radioactiva y suprimen la toxicidad por ciclofosfamida[19][20][21][22].

Asimismo, se ha demostrado que los principios activos de Withania somnifera, que comprenden los sitoindósidos VII-X y Withaferin-A, tienen una actividad antiestrés significativa contra modelos agudos de estrés experimental, acciones inmunomoduladoras, inhibición de los déficits cognitivos en modelos animales de la enfermedad de Alzheimer, actividad antioxidante en áreas cerebrales de ratas y acción ansiolítica-antidepresiva en ratas[23][24][25][26][27][28].

También se informó que Withania somnifera tiene efectos significativos sobre las funciones de los neurotransmisores del cerebro de las ratas[29]. Un estudio, usando un modelo experimental de estrés crónico, reportó que hubo un agotamiento significativo de las enzimas oxidantes de barrido de radicales libres y un aumento en la peroxidación de lípidos en la corteza frontal de las ratas y en el estriado que podría revertirse mediante la administración subcrónica de glicocowithanolides de Withania somnifera[30].

Estudios recientes han demostrado que el estrés crónico impredecible, similar al utilizado en la presente investigación, puede inducir intolerancia a la glucosa, úlceras gástricas, aumento de los niveles de corticosterona en plasma, depresión conductual, déficits cognitivos, disfunción sexual masculina e inmunosupresión, asociadas con un aumento del estrés oxidativo y perturbaciones significativas en los niveles de monoamina en diferentes áreas del cerebro de ratas[31][32][33].

Estos efectos fisiológicos y bioquímicos del estrés crónico fueron inhibidos por una formulación poli-herbal que contiene Withania somnifera. Se ha postulado que el estrés está involucrado en la etiopatogénesis de una gran variedad de enfermedades, que van desde trastornos psiquiátricos como la depresión y la ansiedad, la inmunosupresión, los trastornos endocrinos como la diabetes mellitus, la disfunción sexual masculina, las disfunciones cognitivas, la úlcera péptica, la hipertensión y la colitis ulcerosa. Los ansiolíticos benzodiazepínicos, a pesar de tener una actividad antiestrés significativa contra modelos agudos de estrés, no han demostrado ser efectivos contra los efectos adversos inducidos por el estrés crónico sobre la inmunidad, el comportamiento, la cognición, la úlcera péptica y la hipertensión. Además, estos fármacos tienen efectos adversos sobre el feto durante el embarazo y sobre el recién nacido durante la lactancia[34][35][36].

El Panax ginseng ha sido ampliamente utilizado como un adaptógeno para la terapia de los trastornos de estrés. Sin embargo, ahora se sabe que induce varios efectos adversos como el "síndrome de abuso de ginseng" en el uso prolongado[37]. Dado el creciente reconocimiento de que el estrés crónico, particularmente cuando el individuo es incapaz de lidiar con el factor estresante, puede subyacer a la creciente incidencia de trastornos físicos y mentales relacionados con el estrés, existe la necesidad de un adaptógeno antiestrés efectivo. La respuesta probablemente se encuentra en los rasayanas ayurvédicos, el más prometedor de los cuales es Withania somnífera.

La actividad ansiolítica y antidepresiva del extracto de raíz de alcohol y glicowitanolides aislados, sitoindósidos, y withaferin A ha sido demostrada en modelos animales de depresión y ansiedad. El extracto de raíz de Withania somnifera produce sedación, reducción de la actividad locomotora, potenciación del sueño inducido por tiopentistas, reducción de catecolaminas y acetilcolina con un aumento de la histamina y la serotonina en el tejido cerebral de ratones, y un retraso en las convulsiones inducidas por semicarbazida y pentilenetetrazol[38][39].

Es posible que la actividad GABAérgica sea el mecanismo para mejorar las disfunciones de la señalización GABAérgica, como en los trastornos de ansiedad e insomnio[40]. Siete estudios clínicos han descrito a Withania somnifera como un adaptógeno seguro y efectivo para el tratamiento de afecciones neuropsiquiátricas relacionadas con el estrés: ansiedad y trastorno bipolar.

Se han descrito los efectos ansiolíticos de cinco preparados de Withania diferentes de cinco estudios clínicos con un total de 157 pacientes. Tres de estos fueron ensayos doble ciego, aleatorios controlados con placebo, con puntuaciones de calidad de 2 a 3 de 5. Las limitaciones de los estudios incluyen detalles insuficientes con respecto a la preparación del extracto, la administración del tratamiento y los procedimientos de asignación al azar. El mejor estudio (puntuación de calidad 4), un ECA doble ciego de 8 semanas, utilizó un extracto de agua, 250-500 mg/día de Withania (Sensoril), en 60 sujetos con trastorno bipolar[41]. En comparación con los sujetos de control, los sujetos que tomaron Withania somnifera tuvieron un rendimiento significativamente mejor en tres tareas cognitivas: amplitud de dígitos hacia atrás (P=0,035), tiempo de respuesta neutral de los flancos (P=0,033) y respuesta cognitiva social de la prueba de agudeza emocional de Penn (P=0,045). Otras pruebas cognitivas no fueron significativamente diferentes entre los grupos. Los eventos adversos fueron similares en ambos grupos. Estos resultados alentadores necesitan ser confirmados en ensayos clínicos de productos estandarizados.

Un estudio prospectivo, aleatorizado, doble ciego, controlado con placebo examinó la seguridad y eficacia de una alta concentración de extracto de espectro completo (KSM-66) de raíz de Ashwagandha para reducir el estrés y la ansiedad en 64 adultos con antecedentes de estrés crónico. El estudio demostró que el extracto de Ashwagandha KSM-66 redujo significativamente las sensaciones de estrés, depresión, ansiedad e incrementó significativamente el bienestar general después de 60 días en base a tres conjuntos diferentes de escalas de estrés (p< 0.0001).  Además, hubo una disminución estadísticamente significativa en los niveles de cortisol en suero después de 60 días (p< 0,0006). Hubo unos pocos informes de efectos adversos tanto en el grupo de placebo como en el de tratamiento, como náuseas, estreñimiento y somnolencia. La dosis de KSM-66 Ashwagandha fue de 600 mg estandarizada a por lo menos 5% de withanolides[42].

Un ensayo similar doble ciego, aleatorizado y controlado con placebo evaluó la seguridad y eficacia de un extracto estandarizado de raíz de Ashwagandha para el control del peso corporal en 52 adultos que experimentaban estrés crónico. KSM- 66 La raíz Ashwagandha fue efectiva para disminuir varios síntomas psicológicos y físicos de estrés crónico. Hubo cambios estadísticamente significativos desde el inicio hasta las cuatro y ocho semanas en las medidas de resultado primarias, como varias puntuaciones del cuestionario, niveles séricos de cortisol, peso corporal e índice de masa corporal (IMC). La disminución del IMC y del peso corporal puede ser el resultado de la disminución de los niveles de cortisol, ya que no se evaluó el historial de la dieta. La reducción de la puntuación de estrés percibido (PSS) 5 fue del 22,1% en la cuarta semana (p = 0,0025) y del 32,7% en la octava semana (p < 0,0001). La diferencia entre las reducciones medias de los niveles séricos de cortisol en los grupos de tratamiento y de placebo se observó después de la cuarta semana (p = 0,0328) y la octava semana (p = 0,0019) de tratamiento. Sin embargo, no hubo cambios positivos estadísticamente significativos con respecto al valor inicial de la presión arterial, la frecuencia respiratoria y la frecuencia del pulso[43].

Un estudio doble ciego controlado por placebo examinó la eficacia de 500 mg de Ashwagandha en 39 pacientes diagnosticados con trastorno de ansiedad ICD-10. A las seis semanas, varios pacientes más cumplieron con los criterios de respuesta ansiolítica en el grupo de fármacos (88,2%) en comparación con el grupo de placebo (50%), lo que fue estadísticamente significativo (p < 0,026). La hierba fue bien tolerada y no causó más efectos adversos que el placebo[44].

Un estudio prospectivo, doble ciego, multidosis, controlado con placebo, cruzado con 26 hombres sanos, de 20 a 35 años de edad, a quienes se les dio dos cápsulas dos veces al día, por la mañana y por la noche, para evaluar el efecto del extracto acuoso estandarizado de Withania somnifera en las pruebas de rendimiento cognitivo y psicomotor en participantes humanos sanos. El estudio mostró una mejora significativa en el tiempo de reacción en 5 de las 6 pruebas de rendimiento psicomotor. Withania somnifera aporta cambios significativos en las funciones neurológicas de referencia, ya que los Sitoindósidos VII- X y la Withaferina A (glicovitanolidos) aumentan la capacidad de la acetilcolina cortical muscarínica, con una modulación de la neurotransmisión colinérgica[45].

Un estudio clínico comparativo doble ciego controlado por placebo de los efectos de Withania somnifera, Panax ginseng y placebo sobre el desempeño psicomotor en 30 participantes sanos concluyó que hubo una mejoría significativa en la función sensomotora, el tiempo de reacción auditiva y la capacidad aritmética mental[46].

Los diversos trabajos de investigación muestran que el estrés es la causa de muchas enfermedades que amenazan la vida. Por lo tanto, con el apoyo de los diferentes estudios mencionados anteriormente, Ashwaganda puede ser utilizado eficazmente para prevenir las complicaciones de las reacciones de estrés a través de su actividad adaptogénica. El alcance de la eficacia de Ashwaganda puede extenderse a muchas enfermedades inducidas por el estrés, como los trastornos del estado de ánimo, las enfermedades autoinmunes, los trastornos del estilo de vida, los trastornos endocrinos e incluso la malignidad.

Recientemente se ha realizado un estudio con un extracto acuoso estandarizado de las raíces y hojas de Withania somnifera para examinar el impacto de la suplementación en las adaptaciones de entrenamiento de fuerza demostrándose que una dosis de 500 mg mejora la fuerza de la parte superior e inferior del cuerpo, apoya una distribución favorable de la masa corporal y es bien tolerada clínicamente en hombres recreativamente activos durante un período de entrenamiento y entrenamiento de resistencia de 12 semanas[47].

Ashwagandha es generalmente seguro cuando se toma en el rango de dosis prescrito[48]. Se ha demostrado que las dosis mayores causan malestar gastrointestinal, diarrea y vómitos. Una dosis típica de Ashwagandha es de 3-6 gramos diarios de la raíz seca, 300-500 mg de un extracto estandarizado que contiene 1,5 por ciento de withanolides, o 6-12 ml de un extracto fluido 1:2 por día.

 



[1] Panossian A. Understanding adaptogenic activity: specificity of the pharmacological action of adaptogens and other phytochemicals. Ann N Y Acad Sci.  2017 Aug;1401(1):49-64.

[2] Wagner H, Nörr H, Winterhoff H. Plant adaptogens. Phytomedicine. 1994 Jun;1(1):63-76.

[3] Panossian A, Wikman G, Wagner H. Plant adaptogens. III. Earlier and more recent aspects and concepts on their mode of action. Phytomedicine. 1999 Oct;6(4):287-300.

[4] Kenakin, T.P. 2012. Pharmacology in Drug Discovery and Development: Understanding Drug Response. Elsevier Inc.

[5] Panossian, A., R. Hamm, G. Wikman, et al. Synergy and antagonism of active constituents of ADAPT-232 on transcriptional level of metabolic regulation in isolated neuroglia cells. Front. Neurosci 2013 7: 16.

[6] Panossian, A., R. Hamm, O. Kadioglu, et al. Mechanism of action of Rhodiola, salidroside, tyrosol and triandrin in isolated neuroglial cells: an interactive pathway análisis of the downstream effects using RNA microarray data. Phytomedicine 2014 21: 1325–1348.

[7] Panossian, A., E.J. Seo, G. Wikman, et al. Synergy assessment of fixed combinations of Herba Andrographidis and Radix Eleutherococci extracts by transcriptomewide microarray profiling. Phytomedicine 2015 22: 981– 992.

[8] Cho, C.R., M. Labow, M. Reinhardt,et al. The application of systems biology to drug discovery. Curr. Opin. Chem. Biol. 2006 10: 294–302.

[9] Van Regenmortel, M.H. Reductionism and complexity in molecular biology. Scientists now have the tools to unravel biological and overcome the limitations of reductionism. EMBO Rep. 2004 5: 1016–1020.

[10] Hopkins AL. Network pharmacology: the next paradigm in drug discovery. Nat. Chem. Biol. 2008 4: 682–690.

[11] Elsakka M, Grigorescu E, Stanescu U, et al. New data referring to chemistry of Withania somnifera species. Rev Med Chir Soc Med Nat Iasi 1990;94:385-387.

[12] Bhattacharya SK, Bhattacharya A, Sairam K, Ghosal S. Anxiolytic-antidepressant activity of Withania somnifera glycowithanolides: an experimental study. Phytomedicine 2000;7:463- 469.

[13] Archana R, Namasivayam A. Antistressor effect of Withania somnifera. J Ethnopharmacol 1999;64:91-93. 15. Dhuley JN. Adaptogenic and cardioprotective action of ashwagandha in rats and frogs. J Ethnopharmacol 2000;70:57-63.

[14] Singh B, Saxena AK, Chandan BK, et al. Adaptogenic activity of a novel, withanolide-free aqueous fraction from the root of Withania somnifera. Phytother Res 2001;15:311-318.

[15] Bhattacharya A, Ghosal S, Bhattacharya SK. Antioxidant effect of Withania somnifera glycowithanolides in chronic footshock stressinduced perturbations of oxidative free radical scavenging enzymes and lipid peroxidation in rat frontal cortex and striatum. J Ethnopharmacol 2001;74:1-6.

[16] Bhattarcharya SK, Muruganandam AV. Adaptogenic activity of Withania somnifera: an experimental study using a rat model of chronic stress. Pharmacol Biochem Behav 2003;75:547- 555.

[17] Weiner MA, Weiner J. Ashwagandha (Indian ginseng). Herbs that heal. Mill Vallery, CA: Quantum Books; 1994. p. 70 – 2.

[18] Brekhman II, Dardymov IV. New substances of plant origin which increase non-specific resistance. Annu Rev Pharmacol Toxicol 1969;9:419 – 39.

[19] Davis L, Kuttan G. Suppressive effect of cyclophospamide-induced toxicity by Withania somnifera extract in mice. J Ethnopharmacol 1998;62: 209 – 14.

[20] Al-Hindawi MK, Al-Khafaji SH, Abdul-Nabi MH. Anti-granuloma activity of Iraqi Withania somnifera. J Ethnopharmacol 1992;37:113 – 6.

[21] Devi PU. Withania somnifera dunal (ashwagandha): potential plant source of a promising drug for cancer chemotherapy and radiosensitization. Indian J Exp Biol 1996;34:927 – 32.

[22] Begum VH, Sadique J. Effect of Withania somnifera on glycosaminoglycan synthesis in carrageenin-induced air pouch granuloma. Biochem Med Metab Biol 1987;38:277.

[23] Ghosal S, Srivastava RS, Bhattacharya SK, Upadhyay SN, Jaiswal AK, Chattopadhyay U. Immunomodulatory and CNS effects of sitoindosides IX and X, two new glycowithanolides form Withania somnifera. Phytother Res 1989;2:201 – 6.

[24] Bhattacharya SK, Bhattacharya A, Sairam K, Ghosal S. Anxiolytic – antidepressant activity of Withania somnifera glycowithanolides: an experimental study. Phytomedicine 2000a;7:463 – 9.

[25] Bhattacharya SK, Kumar A, Jaiswal AK. Effect of Mentat, a herbal formulation, on experimental models of Alzheimer’s disease and central cholinergic markers in rats. Fitoterapia 1995;LXVI:216 – 22.

[26] Bhattacharya SK, Kumar A. Effect of Trasina, an Ayurvedic herbal formulation on experimental models of Alzheimer’s disease and central cholinergic markers in rats. J Altern Complement Med 1997;3:327 – 36.

[27] Bhattacharya SK, Kumar A, Ghosal S. Effects of glycowithanolides from Withania somnifera on an animal model of Alzheimer’s disease and perturbed central cholinergic markers of cognition in rats. Phytother Res 1995;9:110 – 3.

[28] Bhattacharya SK, Goel RK, Kaur R, Ghosal S. Antistress activities of sitoindosides VII and VIII, new acyl steryl glucosides from Withania somnifera. Phytother Res 1987;1:32 – 3.

[29] Schliebs R, Liebmann A, Bhattacharya SK, Kumar A, Ghosal S, Bigl V. Systemic administration of defined extracts from Withania somnifera (Indian ginseng) and Shilajit differentially affects cholinergic but not glutamateric and gabaergic markers in rat brain. Neurochem Int 1996; 30:181 – 7.

[30] Bhattacharya A, Ghosal S, Bhattacharya SK. Antioxidant effect of Withania somnifera glycowithanolides in chronic foot shock stress-induced perturbations of oxidative free radical scavenging enzymes and lipid peroxidation in rat frontal cortex and striatum. J Ethanopharmacol 2001; 74:1 – 6.

[31] Bhattacharya A, Muruganandam AV, Kumar V, Bhattacharya SK. Effect of polyherbal formulation, Eumil, on neurochemical perturbations induced by chronic stress. Indian J Exp Biol 2002;40:1161 – 3.

[32] Bhattacharya SK, Bhattacharya A, Chakrabarti A. Adaptogenic activity of Siotone, a polyherbal Ayurvedic rasayana formulation. Indian J Exp Biol 2000;38:119 – 28.

[33] Bhattacharya SK. Behavioural and physiological perturbations induced by chronic unpredictable footshock stress in rats. Effect of a standardized extract of Withania somnifera (Ashwagandha). Proceedings of international conference on stress adaptation, prophylaxis and treatment, Bose Institute, Calcutta; 1998. p. 39.

[34] Muruganandam AV, Kumar V, Bhattacharya SK. Effect of polyherbal formulation, Eumil, on chronic stress-induced homoeostatic perturbations in rats. Indian J Exp Biol 2002;40:1151 – 60.

[35] Trevor AJ, Way WL. Sedative – hypnotic drugs. In: Katzung BG, editor. Basic and clinical pharmacology. New York: Lange Medical; 2001. p. 364 – 81.

[36] Elliott GR, Eisdorfer C. Stress and human health. New York: Springer Publishing; 1982.

[37] Dennehy CE, Tsourounis C. Botanicals (herbal medications) and nutritional supplements. In: Katzung BG, editor. Basic and clinical pharmacology. New York: Lange Medical Books; 2001. p. 1088 – 102.

[38] Alexander Panossian, Jay D. Amsterdam.  Adaptogens in Psychiatric Practice. Rhodiola rosea, Schisandra chinensis, Eleutherococcus senticosus, and Withania somnífera. Complementary and Integrative Treatments, 2017.

[39] Yidya Prabhu M, Rao A: Neuropharmacological activity of Withania somnifera. Fitoterapia 1990 66(3):237–240.

[40] Candelario M, Cuellar E, Reyes-Ruiz JM, et al: Direct evidence for GABAergic activity of Withania somnifera on mammalian ionotropic GABAA and GABAp receptors. J Ethnopharmacol 171:264–272, 2015.

[41] Chengappa KN, Bowie CR, Schlicht PJ, et al: Randomized placebo-controlled adjunctive study of an extract of Withania somnifera for cognitive dysfunction in bipolar disorder. J Clin Psychiatry 74(11):1076–1083.

[42] Chandrasekhar K, Kapoor J, Anishetty S. A prospective, randomized double-blind, placebo-controlled study of safety and efficacy of a high-concentration full-spectrum extract of ashwagandha root in reducing stress and anxiety in adults. Indian J Psychol Med. 2012 Jul;34(3):255-62.

[43] Choudhary D, Bhattacharyya S, Joshi K. Body Weight Management in Adults Under  Chronic Stress Through Treatment With Ashwagandha Root Extract: A Double-Blind, Randomized, Placebo-Controlled Trial. J Evid Based Complementary Altern Med. 2017 Jan;22(1):96-106.

[44] Andrade C, Aswath A, Chaturvedi SK, Srinivasa M, Raguram R. A double-blind, placebo-controlled evaluation of the anxiolytic efficacy ff an ethanolic extract of withania somnifera. Indian J Psychiatry. 2000;42(3):295-301.

[45] Pingali U, Pilli R, Fatima N. Effect of standardized aqueous extract of Withania somnifera on tests of cognitive and psychomotor performance in healthy human participants. Pharmacognosy Res. 2014;6(1):12-18 45.

[46] Karnick CR. A double-blind, placebo-controlled clinical studies on the effects of Withania somnifera and Panax Ginseng extracts on psychomotor performance in healthy Indian volunteers. Indian Med. 1991;3:1–5.

[47] Ziegenfuss TN, Kedia AW, Sandrock JE, Raub BJ, Kerksick CM, Lopez HL. Effects  of an Aqueous Extract of Withania somnifera on Strength Training Adaptations and  Recovery: The STAR Trial. Nutrients. 2018 Nov 20;10(11). pii: E1807.

[48] Aphale AA, Chhibba AD, Kumbhaakarna NR, et al. Subacute toxicity study of the combination of ginseng (Panex ginseng) and ashwagandha (Withania somnifera) in rats: a safety assessment. Indian J Physiol Pharmacol 1998;42:299-302.